канд. биол. наук, науч. сотр.
PhD (biological), researcher
канд. биол. наук, вед. науч. сотр.
PhD (biological), Leading Researcher
Африканский клариевый сом (Сlarias gariepinus) – один из перспективных объектов современной аквакультуры. В естественной среде обитания у сома сезон размножения коррелирует с периодами максимального количества осадков. Криоконсервация спермы в аквакультуре широко используется для круглогодичного обеспечения гаметами и последующего оплодотворения вне репродуктивных сезонов. Целью исследований явилась оптимизация методов криоконсервации спермы клариевого сома для использования на предприятиях аквакультуры юга России. Исследовано два состава среды-разбавителя и экспериментальная установка для контролируемого замораживания спермы сома в парах жидкого азота. Скоростной режим замораживания спермы рыб является видоспецифичным и подбирается для каждого вида рыб экспериментальным путем. Использование экспериментальной криокамеры из пенополистирола внутренним размером (В×Ш×Д) 21×20×24,5 см и толщиной стенки 5,5 см позволило провести глубокое замораживание репродуктивных клеток сома со скоростью охлаждения 6,5 градусов в минуту до температуры –80°С с дальнейшим погружением в жидкий азот (t=–196°C). В первом варианте опыта в состав среды-разбавителя входил базовый раствор (NaCl, KCl, CaCl2, NaHCO3) и диметилсульфоксид в концентрации 5 %. Во втором варианте опыта к этому составу была добавлена глюкоза в концентрации 18 г/л. Среднее время жизни сперматозоидов после оттаивания в опыте без глюкозы составило 46 сек., что на 5 сек. меньше, чем в опыте с глюкозой. В опыте с добавлением глюкозы доля подвижных сперматозоидов составила 40 %, тогда как в опыте без глюкозы лишь 20 %. Показано, что добавление к среде-разбавителю глюкозы обеспечивает наилучшую выживаемость спермы африканского сома по показателям подвижности после оттаивания.
African sharptooth catfish (Сlarias gariepinus) is one of the promising objects of modern aquaculture. In the natural habitat, the breeding season of catfish correlates with periods of maximum rainfall. Cryopreservation of sperm in aquaculture is widely used to provide gametes for fertilization yearround outside the reproductive seasons. The aim of the research was to optimize the methods of cryopreservation of sharptooth catfish sperm for use in aquaculture enterprises in the south of Russia. Two cryoprotectant compositions and an experimental setup for controlled freezing of catfish sperm in liquid nitrogen vapor were studied. The speed mode of freezing fish sperm is species -specific and is selected for each fish species experimentally. Using an experimental cryochamber made of expanded polystyrene with the internal dimensions (H×W×D) of 21×20×24.5 cm and a wall thickness of 5.5 cm made it possible to deep freeze the reproductive cells of catfish at a cooling rate of 6.5 degrees per minute to a temperature of – 80°C with further immersion in liquid nitrogen (t= –196°C). In the first version of the experiment, the cryoprotector included a basic solution (NaCl, KCl, CaCl2, NaHCO3) and dimethyl sulfoxide at a concentration of 5%. In the second version of the experiment, glucose at a concentration of 18 g/l was added to this composition. The average lifetime of spermatozoa after thawing in the experiment without glucose was 46 sec., which is 5 sec. less than in the experiment with glucose. In the experiment with the addition of glucose, the proportion of motile spermatozoa was 40%, while in the experiment without glucose it was only 20%. It has been shown that addition of glucose to the protector provides the best survival of African catfish sperm in terms of motility after thawing.
The authors declare that there are no conflicts of interest present.