Микробный пейзаж половых путей здоровых коров с различным сроком стельности

Учение о нормальной микрофлоре организма человека и животных в настоящее время находится в центре внимания клинических микробиологов и широкого круга специалистов клинического профиля. Известно, что микрофлора влагалища зависит от множества факторов  внутренней  и  внешней  среды,  поэтому  в  настоящее  время  её принято  рассматривать  как  экосистему,  обладающую  уникальным комплексом механизмов, обеспечивающим его резистентность по отношению к чужеродным микроорганизмам и поддерживающим репродуктивное здоровье. Целью исследования явилось изучение изменения микробиоценоза влагалища у коров в разные периоды стельности. Объектом исследования служили клинически здоровые коровы (n=10) красно-пёстрой породы (голшитинизированные), а предметом исследования – шеечно-вагинальная слизь. На 150-160, 210-220 и 260-265 день стельности у коров производился отбор образцов слизи с помощью стерильных зонд тампонов для бактериологических исследований.  Установлено,  что  представители  нормофлоры,  а  также  условно-патогенной и патогенной микрофлоры присутствовали во влагалищных выделениях жи вотных всех периодов стельности. Однако общая бактериальная обсемененность половых путей у коров в первой половине и во второй половине третьего триместра беременности характеризовалась её снижением на 29,2  и 33,3%  соответственно относительно данных полученных во втором триместре. Также необходимо отметить, что ко второй половине третьего триместра беременности наблюдается увеличение облигатной нормофлоры за счёт лакто- и бифидобактерий на 27,1% и в 4 раза соответственно, с преобладанием рода Lactobacillus в количественном отношении. На фоне этого количество транзиторной микрофлоры снижалось на 34,2-57,1% (Р˂0,05).

1. Лаптев Г.Ю., Новикова Н.И., Ильина Л.А., Йылдырым Е.А., Бумова В.А., Корочкина Е.А. Исследование вагинальной слизи высокопродуктивных коров в послеотёльный период посредством ПЦР в реальном времени. Российский ветеринарный журнал. 2014; 3: 10-12.

2. Мелкумян А.Р., Припутневич Т.В., Анкирская А.С., Трофимов Д.Ю., Муравьёва В.В., Муллабаева С.М., Завьялова М.Г. Видовой состав лактобактерий при различном состоянии микробиоты у беременных. Клиническая микробиология и антимикробная химикотерапия. 2013; 15 (1): 72-79.

3. Сашнина Л.Ю., Шахов А.Г., Владимирова Ю.Ю., Никоненко Г.В. Роль цитокинов в обеспечении физиологического течения беременности. Ветеринарный фармакологический вестник. 2022; №3 (20): 144-152. doi: 10.17238/issn2541-8203.2022.3.144

4. Сейтханова Б.Т., Шапамбаев Н.З., Олжаева Р.Р., Калменова П.Е. Микробиоценоз влагалища и кишечника беременных женщин. Наука и здравоохранение. 2014; 1: 70-71.

5. Скориков В.Н., Нежданов А.Г., Михалев В.И. Акушерская и гинекологическая патология у коров первотёлок семментальской породы при разном возрасте ввода их в производство. Ветеринария. 2017; 1: 38-41.

6. Bergey D.H., Krieg N.R., Holt J.G. Bergey's manual of systematic bacteriology. Baltimore, MD : Williams & Wilkins, 1989; 2648 рр.

7. Boris S., Barbés C. Role played by lactobacilli in controlling the population of vaginal pathogens. Microb Infect. 2000; 2: 543– 546. doi: 10.1016/S1286-4579(00)00313-0.

8. Deng F., McClure M., Rorie R., Wang X., Chai J., Wei X., Lai S., Zhao J. The vaginal and fecal microbiomes are related to pregnancy status in beef heifers. J Anim Sci Biotechnol. 2019;10: 92. doi: 10.1186/s40104-019-0401-2.

9. Kalinka J., Krajewski P., Sobala W., Wasiela M., Brzezińska-Błaszczyk E. The association between maternal cervicovaginal proinflammatory cytokines concentrations during pregnancy and subsequent earlyonset neonatal infection. J Perinat Med. 2006; 34 (5): 371-377. DOI: 10.1515/JPM.2006.075.

10. Laguardia-Nascimento M., Branco K.M., Gasparini M.R., Giannattasio-Ferraz S., Leite L.R., Araujo F.M., Salim A.C., Nicoli J.R., de Oliveira GC, Barbosa-Stancioli E.F. Vaginal Microbiome Characterization of Nellore Cattle Using Metagenomic Analysis. PLoS One. 2015;10 (11): e0143294. doi:10.1371/journal.pone.0143294.

11. Quinn P.J., Markey B.K., Leonard F.C., FitzPatrick E.S., Fanning S [et al.] Veterinary Microbiology and Microbial Disease. Wiley-Blackwell, 2011; 912 рр.

12. Verstraelen H., Verhelst R., Claeys G., De Backer E., Temmerman M., Vaneechoutte M. Longitudinal analysis of the vaginal microflora in pregnancy suggests that L crispatus promotes the stability of the normal vaginal microflora and that L gasseri and/or L iners are more conducive to the occurrence of abnormal vaginal microflora. BMC Microbiol. 2009; 9:116. doi:10.1186/1471-2180-9-116.

13. Zhukov M.S., Alekhin Yu.N. Detection of the upper respiratory tract bacteria in newborn calves. Reproduction in domestic animals. 2022; 57 (S1): 97. DOI: 10.1111/rda.14052.