Сроки удержания диагностических красителей на резаной ране роговицы

Проводили  сравнительные  исследования четырех  основных  офтальмологических красителей по их способности, после однократной  кратковременной  экспозиции, окрашивать  резаную  рану  роговицы.  Для исследования были отобраны 12 годовалых крыс линии «Вистар» массой 180-220 грамм. Из них сформировали 4 опытные группы по 3 крысы в каждой. Всем животным наносили резаные раны роговицы. Для обезболивания роговицы использовали 10,0% раствор лидокаина. Перед нанесением резаной раны животных вводили в наркоз препаратом «Севофлуран». Контроль глубины наносимой раны проводился визуально при помощи микроскопа при увеличении в 4-6 раз. Далее проводили окрашивание резаной раны роговицы различными красителями: животным 1 группы – флуоресцеином, 2 группы – рибофлавином, 3 группы – бенгальским розовым, 4 группы – лиссаминовым зеленым. Экспозиция всех красителей, до устранения излишков, составляла 1 минуту. Степень окрашивания роговицы оценивали и фотодокументировали сразу после устранения излишков красителей и далее через 10 мин., 20 мин., 30 мин., 60 мин., 90 мин., и 120 мин. Роговицу визуализировали и фотодокументировали при помощи микроскопа «jingleszcn 315W» при увеличении x 6.0. При длительных исследованиях целесообразно использовать бенгальский розовый, который визуализирует раневой дефект в течение 60 минут после окрашивания. Лиссаминовый зеленый следует использовать в случаях, когда необходим контраст между красителем и роговицей, и/или нижележащими структурами глаза. Флуоресцеин и рибофлавин достаточно быстро диффузно распространяются в окружающие ткани, а также окрашивают слезную пленку,  что  может  давать  ложноположительный  результат  при  диагностике  раневого дефекта роговицы.

1. Плотникова, Е.В. Применение флюоресцеина в клинической практике врача-офтальмолога / Е.В. Плотникова // The EYE Глаз. - 2019. - Т. 21. - № 4. - С. 41-48.

2. Прудникова, Е.В. Офтальмология. Специальные методы исследования у животных. Методические указания / Е.В. Прудникова, А.А. Стекольников, М.А. Нарусбаева, Е.В, Титова // Cанкт-Петербург. - СПбГУВМ. - 2021. - 31 с.

3. Стекольников, А.А. Ветеринарная офтальмология: учебник / А.А. Стекольников, Л.Ф. Сотникова. - СПб: Проспект Науки, 2017. - 296 с.

4. Бржеский, В. В. Роговично-коньюнктивальный ксероз (диагностика, клиника, лечение) / В. В. Бржеский, Е. Е. Сомов // СПб.: Левша, 2003. - 119 с.

5. Лоскутов, И.А. Современная оптометрия. Краткое руководство / И.А. Лоскутов, А.В. Корнеева // ГЭОТАР-Медиа. - 2021. - 344 с.

6. An evaluation of the efficacy of fluorescein, rose bengal, lissamine green, and a new dye mixture for ocular surface staining / D.R. Korb, J.P. Herman, V.M. Finnemore [et all. ] // Eye Contact Lens. - 2008. - № 34(1). - Р. 61-64.

7. Зайнутдинова, Г.Х. Препарат для диагностики повреждений эпителия роговицы / Г.Х. Зайнутдинова, Г.М. Казакбаева, Л.И. Халимова // Медицинский вестник Башкортостана. - 2017. - Т. 12. - № 1 (67). - С 62-65.

8. Петраевский, А.В. Клинико-цитологическая диагностика синдрома «сухого глаза» / А. В. Петраевский, К. С. Тришкин // Вестник ВолгГМУ. - 2012. - № 4(44). - С 52-54.

9. Awisi, G.D. A simple and cost effective method for preparing FL and LG solutions / G.D. Awisi, C.G. Begley, N.J. Daniel // Ocul Surf. - 2018. - № 16(1). - Р. 139-145.

10. Khan-Lim, D. Still confused about Rose Bengal? / D. Khan-Lim, M. Berry // Current Eye Research. - 2004. - V.29. - N4-5. - p. 311-317.

11. Мак-Доннелл, К. Лиссаминовый зеленый / К. Мак-Доннелл // Современная оптометрия. - 2010. - № 5(35). - С. 14-16.

12. Comparative performance of lissamine green stains / A. Delaveris, U. Stahl, M. Madigan, I. Jalbert // Cont Lens Anterior Eye. - 2018. - № 41(1). - Р. 23-27.

13. Obtaining Lissamine Green 1% Solution for Clinical Use / M. Stock, D. Salvay, B. Shoss, [et all. ] //Cornea. - 2015. - № 34(11). - P. 1523-5.