Микроморфометрические показатели щитовидной железы и антиоксидантный статус у крыс при остром радиационном поражении на фоне применения ДАФС-25 и МОНКЛАВИТ-1

Поиск рецептур радиозащитных средств с различными механизмами действия является одним из перспективных направлений в радиобиологии. Одним из компонентов антиоксидантной системы организма являются глутатионпероксидазы – селен-зависимые протеины, способные нейтрализовать активные формы кислорода и ингибировать перекисное окисление липидов. Кроме того, селен участвует в метаболизме тиреоидных гормонов и поддержании клеточного гомеостаза тироцитов. Щитовидная железа участвует в регуляции метаболизма, а также влияет на функционирование многих систем организма. Следовательно, от функционального состояния щитовидной железы будет зависеть течение и исход лучевой патологии. Для синтеза гормонов щитовидной железы необходим йод. ДАФС-25 – кормовая добавка для сельскохозяйственных животных, содержащая диацетофенонилселенид (массовая доля селена – 25%). Монклавит-1 – ветеринарный препарат, содержащий йод в виде полимерного комплекса. Комбинированное применение селена и йода в качестве радиозащитного средства на данный момент малоизучено. Таким образом, целью данной работы явилось оценить изменения концентрации малонового диальдегида и функционального состояния щитовидной железы при остром радиационном поражении на фоне применения кормовой добавки ДАФС-25 и препарата Монклавит-1. С целью проведения эксперимента по принципу пар-аналогов было сформировано 5 групп животных по 10 особей в каждой. Определение концентрации малонового диальдегида проводили колориметрическим методом. Отобранный для гистологического исследования материал фиксировали в растворе формалина, затем обезвоживали, парафинировали и окрашивали гематоксилин-эозином.
Применение ДАФС-25 и Монклавит-1 способствует снижению концентрации малонового диальдегида в крови облученных животных и относительному восстановлению гистоструктуры щитовидной железы на 30 сутки эксперимента.

1. Barrera, G. Lipid Peroxidation-Derived Aldehydes, 4-Hydroxynonenal and Malondialdehyde in Aging-Related Disorders / G. Barrera, S. Pizzimenti, M. Daga [et al.] // Antioxidants (Basel). – 2018. – Vol.7. – №8. – P. 102. doi: 10.3390/antiox7080102.

2. Daniele Del Rio. A review of recent studies on malondialdehyde as toxic molecule and biological marker of oxidative stress / Daniele Del Rio, J. A. Stewart, N. Pellegrini // Nutrition, Metabolism and Cardiovascular Diseases. – 2005. – Vol. 15. – №4. – P. 316–328.

3. Finkel T, Holbrook NJ. Oxidants, oxidative stress and the biology of ageing. Nature. 2000;408(6809):239–247. doi: 10.1038/35041687

4. Nathan, C. Beyond oxidative stress: an immunologist's guide to reactive oxygen species. / C. Nathan, A. CunninghamBussel // Nat Rev Immunol. – 2013. – Vol. 13. – №5. – P. 349–361. doi: 10.1038/nri3423.

5. Карпенко, Л. Ю. Оценка влияния применения йод- и селенсодержащих препаратов на биохимический статус коров в биогеохимической провинции / Л. Ю. Карпенко, А. А. Бахта, К. П. Иванова // Нормативно-правовое регулирование в ветеринарии. – 2023. – № 1. – С. 126-128. – DOI 10.52419/issn2782-6252.2023.1.126.

6. Tsikas, D. Assessment of lipid peroxide tion by measuring malondialdehyde (MDA) and relatives in biological samples: Analytical and biological challenges. / D. Tsikas // Anal Biochem. – 2017. – №524. – P. 13–30. doi: 10.1016/j.ab.2016.10.021.

7. Weismann, D. Complement factor H binds malondialdehyde epitopes and protects from oxidative stress. / D. Weismann, K. Hartvigsen, N. Lauer [et al.] // Nature. – 2011. Vol. 478(7367). – P. 76–81. doi: 10.1038/nature10449.

8. Niki, E. Lipid peroxidation: physiological levels and dual biological effects. / E. Niki // Free Radic BiolMed. – 2009. – Vol. 47. – №5. P. 469–484. doi: 10.1016/j.freeradbiomed.2009.05.032.

9. Wang, F. Selenium and thyroid diseases. / F. Wang, C. Li, S. Li [et al.] // Front Endocrinol (Lausanne). – 2023. – Vol.14. – P. 1133000. doi: 10.3389/fendo.2023.1133000.

10. Влияние препаратов йода и селена на течение и исход острого радиационного поражения / Р. О. Васильев, И. С. Драчев, Н. Ю. Югатова [и др.] // Радиационная биология. Радиоэкология. – 2021. – Т. 61, № 5. – С. 480-491. – DOI 10.31857/S0869803121050106.

11. Михайлов П.П., Коровкина Э.П. Методических указаний по доклиническому изучению радиопротекторных свойств фармакологических веществ // Руководство по экспериментальному (доклиническому) изучению новых фармакологических веществ / Под ред. Р.У. Хабриева. 2-е изд. М.: Медицина, 2005. С. 724–429.

12. Влияние комбинированного применения ДАФС-25к и "Монклавит-1" на клиническое проявление острого радиационного поражения у крыс / Р. О. Васильев, Е. И. Трошин, Н. Ю. Югатова, С. А. Бревнова // Ветеринарный врач. – 2021. – № 4. – С. 69-76. – DOI 10.33632/1998-698X.2021-4-69-76.

13. Выбор дозы препарата для доклинического исследования: межвидовой перенос доз / Е.В. Шекунова, М.А. Ковалева, М.Н. Макарова [и др.] // Ведомости Научного центра экспертизы средств медицинского применения. – 2020. –Т. 10 – № 1. – С. 19–28.

14. Trenz, T.S.Going Forward and Back: The Complex Evolutionary History of the GPx. / T.S. Trenz, C.L. Delaix, A.C. TurchettoZolet [et al.] // Biology (Basel). – 2021. – Vol.10. – №11. – P. 1165. doi: 10.3390/biology10111165.

15. Anipchenko, P.S. The state of the antioxidant system in cows at different densities of radioactive contamination of the soil / P. S. Anipchenko, R. M. Vasilev, V. N. Gaponova [et al.] // – 2020. – Vol. 34, No. S1. – P. 05122. – DOI 10.1096/fasebj.2020.34.s1.05122.

16. Васильев, Р.О. Патоморфологические изменения в органах у мышей при длительном внутрижелудочном введении "Монклавит-1" / Р.О. Васильев, Е. И. Трошин, Н.Ю. Югатова // Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии. – 2018. – № 2. – С. 91-95.

17. Аметов, А.С. Про- и антиоксидантная система у больных гипотиреозом и ее изменения под влиянием препаратов липоевой кислоты / А.С. Аметов, Е.С. Белоножкина, И.И. Павлюченко, А.А. Басов // Проблемы эндокринологии. – 2007. – № 2 (53). – С. 49 – 54.

18. Попова, О.С. Влияние фитобиотического комплекса на лабораторных животных / О.С. Попова, В.А. Барышев // Международный вестник ветеринарии. – 2018. – № 2. – С. 60-64.

19. Кузьмин, В.А. Терапевтическая эффективность комплексных препаратов на основе наносеребра / В.А. Кузьмин, А.М. Лунегов, А.В. Кудрявцева [и др.] // Иппология и ветеринария. – 2014. – № 3(13). – С. 61-64.

20. Лыгденов, Д.В. Влияние органических форм йода и цинка на соотношение прооксидантных и антиоксидантных систем организма при йодной недостаточности / Д.В. Лыгденов, Е.В. Сордонова, С.Д. Жамсаранова // Известия вузов. Прикладная химия и биотехнология. – 2017. – № 7 (4). – С. 36-43.

21. Васильев, Р.О. Структурные и функциональные изменения в щитовидной железе крыс, подвергнутых общему гаммаоблучению на фоне препаратов йода / Р.О. Васильев, Е.И. Трошин // Ветеринар ный врач. – 2015. – № 1. – С. 37-43.

22. Функциональная активность щитовидной железы крыс при остром радиационном поражении на фоне применения жидкой кормовой добавки "ActiveMix VMG-500" / Р. О. Васильев, А. В. Шишкин, А. Н. Куликов [и др.] // Ветеринарный врач. – 2022. – № 4. – С. 7-15. – DOI 10.33632/1998-698X.2021_7_15

23. Оценка динамики концентрации тиреоидных гормонов у крыс при воздействии гамма-излучения на фоне применения йод-, селен-содержащих кормовых добавок / Р. О. Васильев, Е. И. Трошин, С. А. Бревнова, Н. Ю. Югатова // Ильинские чтения 2022 : Сборник материалов школы-конференции молодых учёных и специалистов, Москва, 06–07 октября 2022 года. – Москва: Государственный научный центр Российской Федерации - Федеральный медицинский биофизический центр имени А.И. Бурназяна, 2022. – С. 83-86.