Случай выявления микоплазменного мастита у коров на фоне вторичной анаэробной инфекции

В статье представлены данные о сочетанном поражении молочного стада коров микоплазмозом и клостридиозом, вызывающих у животных стойкую хронизацию мастита, гнойную форму с абсцессами молочной железы, отёк и гнилостное разложение мышц задних конечностей. Проведённая комплексная лабораторная диагностика (культуральные исследования, MALDI-TOF массспектрометрия, ПЦР) выявила высокую распространённость хронических (5,3%) и субклинических (53,3%) маститов, а также гнойно-некротических поражений мышц (16,6%). Основными возбудителями маститов стали M. bovigenitalium (22,2%), S. aureus (16,7–60%) и T. pyogenes, а гнойных инфекций — B. pyogenes (21,4%) и Clostridium perfringens тип A. Выявлена значительная антибиотикорезистентность: 75% E. Coli устойчивы к фторхинолонам и цефалоспоринам I поколения, 33,3% S. aureus — к цефалоспоринам II поколения (MecA), S. agalactiae и Staphylococcus spp. — к макролидам (ErmB). Рекомендованы препараты выбора: цефтиофур — против T. pyogenes и чувствительных S. aureus, гентамицин — при грамотрицательных инфекциях, тилозин — при микоплазменных маститах, фторхинолоны — при клостридиозах. Лечение должно быть основано на тестировании чувствительности, с строгим соблюдением дозировок и курса. Ключевое значение имеют профилактика (гигиена доения, вакцинация, дезинфекция) и регулярный мониторинг резистентности.

1. Горбатова, Х.С. Микоплазменный мастит в молочных стадах / Х.С. Горбатова, И.С. Коба // В сборнике: Актуальные проблемы ветеринарной медицины, зоотехнии, биотехнологии и экспертизы сырья и продуктов животного происхождения. Сборник трудов научно-практической конференции. Под общей редакцией С.В. Позябина, Л.А. Гнездиловой. – 2022. – С. 168-179.

2. Методические указания по диагностике клостридиозов сельскохозяйственных животных / ФГБУ "ВНИИЗЖ". - Москва, 2022. - 48 с. - Рег. № 0125/2022

3. Правила и методы отбора проб в животноводстве и ветеринарии для лабораторных исследований / Методические рекомендации под ред. Соколовой О.В., Шкуратовой И.А., Порываевой А.П., Безбородовой Н.А., Лысова А.В. и др. – Екатеринбург, Уральский федеральный аграрный научно-исследовательский центр Уральского отделения Российской академии наук. - 2025. – 52 с.

4. Шнейдер, Э.Д. Идентификация и диагностика возбудителей микоплазменных маститов коров при помощи бактериологических и молекулярно-генетических методов / Э.Д. Шнейдер, С.А. Макавчик // Бактериология. - 2018. - Т. 3. - № 1. - С. 22-25

5. Alhussen, M.A. Mycoplasma bovis, M. bovigenitalium and M. dispar as bovine pathogens: brief characteristics of the pathogens (review) / M.A. Alhussen, A. Sprygin, V.V. Kirpichenko A.A. Nesterov // Agricultural Biology. - 2021. - 56(2). – P. 245-260.

6. Bandelj, P. Identification of risk factors influencing Clostridium difficile prevalence in middle-size dairy farms / P.Bandelj, R.Blagus, F.Briski, O.Frlic, et al. // Vet Res. – 2016. – P. 41-47.

7. Bergey's Manual of Systematic Bacteriology: in 5 vols. / ed. by D.R. Boone, R.W. Castenholz. 2nd ed. New York: Springer, 2001-2012. Vol. 3: The Firmicutes / ed. By P. De Vos et al. 2009. 1450 p.

8. Calcutt, M.J. Antimicrobial resistance in Mycoplasma bovis: Emerging threats and therapeutic alternatives / M.J. Calcutt, I. Lysnyansky, K. Sachse, L.K. Fox // Frontiers in Veterinary Science. – 2023. – p. 10.

9. Dawood, A. Mycoplasmas as Host Pantropic and Specific Pathogens: Clinical Implications, Gene Transfer, Virulence Factors, and Future Perspectives / A. Dawood, S.A. Algharib, G. Zhao, T. Zhu, et al // Front Cell Infect Microbiol. – 2022. – P. 3-12.

10. Daubenspeck, J.M. Mycoplasma genitalium Biofilms Contain Poly-GlcNAc and Contribute to Antibiotic Resistance / J.M. Daubenspeck, A.H. Totten, J.Needham, M.Feng, et al. / Front Microbiol. – 2020. – P. 11-27.

11. Dudek, K. Anaerobic co-infections in Mycoplasma-associated bovine mastitis: Pathological and diagnostic aspects / K. Dudek, R.A.J. Nicholas, E. Szacawa, D. Bednarek // Journal of Comparative Pathology. – 2021. -№186. – P. 1-12.

12. Fox L.K. Mycoplasma mastitis in dairy herds: Current trends and challenges / L.K. Fox // Journal of Dairy Science. – 2021. - № 104(3). - P. 2650-2664.

13. Gomes, F. Molecular detection of Mycoplasma bovis in milk samples from mastitic cows in Brazil / F. Gomes, M. Henriques, R. Oliveira // Brazilian Journal of Microbiology. – 2020. - №51(4). – Р. 1783-1790.

14. Jacobson, B.T. Innovative Methodology for Antimicrobial Susceptibility Determination in Mycoplasma Biofilms / B.T. Jacobson, J. DeWit-Dibbert, E.T. Selong, M. Quirk, et al. // Microorganisms. – 2024. - №12(12). – P. 26-50.

15. Larone, D.H. Larone's medically important fungi: A guide to identification (6th ed.) / D.H. Larone // ASM Press. – 2018.

16. Maunsell, F.P. Co-infections of Mycoplasma bovis and anaerobic bacteria in bovine mastitis: Clinical and microbiological features / F.P. Maunsell, G.A. Donovan, C. Risco, M.B. Brown // Veterinary Microbiology. – 2022. - P 268.

17. Nishi, K. Biofilm characterisation of Mycoplasma bovis co-cultured with Trueperella pyogenes / K. Nishi, S. Gondaira, Y. Hirano, M. Ohashi, et al. // Vet Res. – 2025. - №56(1). – р. 22.

18. Oliver, S.P. Antimicrobial Resistance of Mastitis Pathogens / S.P. Oliver, S.E. Murinda // Veterinary Clinics: Food Animal Practice. – 2012. - № 28(2). - P. 165-185.

19. Parker, A.M. A review of mycoplasma diagnostics in cattle / A.M. Parker, P.A. Sheehy, M.S. Hazelton, K.L. Bosward, et al. // Journal of Veterinary Internal Medicine. – 2018. - №32(3). – P. 1241-1252.

20. Ribeiro, M.G. Biofilm formation and antimicrobial resistance profiles of Trueperella pyogenes isolated from bovine mastitis in Brazil / M.G. Ribeiro, R.M. Risseti, C.A.D. Bolaños, K.A. Caffaro et al. // Veterinary Microbiology. – 2021. – P. 109-156.

21. Rood, J.I. Expansion of the Clostridium perfringens toxin-based typing scheme / J.I. Rood, V. Adams, J. Lacey, D. Lyras // Anaerobe. – 2018. -P. 5-10.

22. Silva, R.O.S. Clostridioides difficile in bovine mastitis: Toxinotyping and antimicrobial resistance patterns / R.O.S. Silva, M.L. D'Elia, C.A. de Oliveira Junior, R.L. Santos // Veterinary Microbiology. – 2021. - №256. – P. 109-153.

23. Tolboom, R.K. Mycoplasma mastitis in dairy cattle / R.K. Tolboom, J.J. Snoep, O.C. Sampimon, J. Sol et al. // Tijdschr Diergeneeskd. – 2008. - №133(3). – P. 96-101.

24. Uzal, F.A. Clostridial mastitis in dairy cattle: Diagnostic and therapeutic challenges / F.A. Uzal, M.A. Navarro, J. Asin, E.E. Henderson // Journal of Veterinary Diagnostic Investigation. – 2022. - №34(2). –P. 202-210.

25. World Health Organization. Guidelines for the control of mycoplasma infections in cattle. WHO Animal Health Technical Report Series No. 15. Geneva: World Health Organization. – 2023. – pp. 48.