Современный подход к антибиотикотерапии коров с генитальным микоплазмозом (обзор)

Одним из направлений реализация программы продовольственной безопасности страны является развитие животноводства, как одного из источников обеспечения населения недорогими и качественными продуктами питания. Достижение этой цели тесно связано со снижением заболеваемости животных и издержек на их ветеринарное обслуживание, что обеспечивает уменьшение себестоимости конечной продукции. Существенным препятствием на этом пути является группа заболеваний, характеризующихся неспецифической симптоматикой и длительным латентным течением, к которым относится и генитальный микоплазмоз крупного рогатого скота. В основе терапии животных с микоплазмозом лежит применение антибиотиков. Целью работы являлся ретроспективный анализ изменения чувствительности микоплазм к основным группам антибактериальных препаратов, применяемых для терапии животных, выявление причин устойчивости к ним возбудителя, определение наиболее перспективных на сегодняшний день антибиотиков для лечения животных с микоплазмозом. В ходе изучения зарубежных и отечественных литературных источников было установлено, значительное снижение чувствительности микоплазм к препаратам, демонстрировавшим высокую терапевтическую эффективность 30—40 лет назад, в меньшей степени наблюдалось снижение чувствительности в отношении антибиотиков эффективных 15—20 лет назад. Установлено, что подобная тенденция наблюдается у штаммов микоплазм выделенных в разных странах и на разных континентах. Основной причиной повышения устойчивости микоплазм к антибиотикам являются точечные мутации. На сегодняшний день высокая устойчивость у большинства штаммов микоплазм наблюдается к следующим препаратам — тетрациклин, доксициклин, эритромицин, тилозин, тилмикозин, марбофлоксацин, сохраняется высокая чувствительность к хлортетрациклину, азитромицину, тулатромицину, спирамицину, энрофлоксацину, данофлоксацину.

1. Артеменко, Д. Д. Актуальные вызовы и перспективы развития животноводства в России / Д. Д. Артеменко, А. П. Буевич// Продовольственная политика и безопасность. — Т. 12, № 2. — С. 495—510. DOI 10.18334/ppib.12.2.123001. EDN HHJ.

2. Засухин, В. А. Современные приемы повышения продуктивности животных (КРС) / В. А. Засухин, Я. С. Павлова // Вестник науки. — 2024. — № 12 (81). — С. 2140—2145.

3. Васильев, Р. М. Динамика содержания иммуноглобулинов в сыворотке крови и вагинальном секрете больных генитальным микоплазмозом коров на фоне лечения тулатромицином / Р. М. Васильев, С. В. Васильева // Российский иммунологический журнал. — 2023. — Т. 26, № 2. — С. 189—194. DOI 10.46235/1028-7221-12045-DOT. EDN TLVINB.

4. Распространение микоплазмозов крупного рогатого скота на животноводческих фермах в Российской Федерации в период с 2015 по 2018 год / М. А. Алхуссен, А. А. Нестеров, В. В. Кирпиченко [и др.] // Ветеринария сегодня, июнь №2 (33) 2020. С. 102—108.

5. Trichard, C. J. Mycoplasmas recovered from bovine genitalia, aborted foetuses and placentas in the Republic of South Africa. Onderstepoort / C. J. Trichard, E. P. Jacobsz // J Vet Res. — 1985. Vol. 52, №2. P. 105—110.

6. Dos Santos, S. B. Ocorrência de Mollicutes e Ureaplasma spp. em surto de doença reprodutiva em rebanho bovino no Estado da Paraíba. / S. B. Dos Santos, J. W. Pinheiro Júnior, A. A. F. Oliveira [et al.]// Pesq. Vet. Bras. — 2013. Vol.33, №3. P. 315—318.

7. Васильев, Р. М. Биохимический статус организма коров при генитальном микоплазмозе / Р. М. Васильев // Нормативно—правовое регулирование в ветеринарии. — 2025. — № 1. — С. 33—36. DOI 10.52419/issn2782-6252.2025.1.33.

8. Blanchard, A. Mycoplasmas: Molecular Biology, Pathogenicity and Strategies for Control / A. Blanchard, G. Browning // Horizon Bioscience, Norfolk, UK. — 2005. — 604 р.

9. Schultz, K. K. Optimization of an antibiotic sensitivity assay for Mycoplasma hyosynoviae and susceptibility profiles of field isolates from 1997 to 2011 / K. K. Schultz, E. L. Strait, B. Z. Erickson, N. Levy // Vet. Microbiol. — 2012. — Vol. 158, № 6. — Р. 104—108. DOI: 10.1016/j.vetmic.2012.02.002.

10. Hannan, P. C. In vitro evaluation of various quinolone antibacterial agents against veterinary mycoplasmas and porcine respiratory bacterial pathogens / P. C. Hannan, P. J. O’Hanlon, N. H. Rogers// Res Vet Sci. — 1989. — Vol.46, №2. — Р. 202—211.

11. Gautier-Bouchardon, A.V. Antimicrobial Resistance in Mycoplasma spp. / A.V. Gautier-Bouchardon// Microbiol. Spectr. 2018. — Vol. 6, № 4. DOI: 10.1128/microbiolspec.ARBA-0030-2018.

12. Gautier-Bouchardon, A.V. Overall decrease in the susceptibility of Mycoplasma bovis to antimicrobials over the past 30 years in France / A. V. Gautier-Bouchardon, S. Ferré, D. Le Grand et al. // PLoS One. — 2014.— Vol. 4, № 9: e87672. DOI: 10.1371/journal.pone.0087672.

13. Francoz, D. Determination of Mycoplasma bovis susceptibilities against six antimicrobial agents using the E test method / D. Francoz, M. Fortin, G. Fecteau, S. Messier//Vet Microbiol. — 2005. — Vol.105, №1. — Р. 57—64. DOI: 10.1016/j.vetmic.2004.10.006. Epub 2004. Nov 30.

14. Kawai, K. Antimicrobial susceptibilities of Mycoplasma isolated from bovine mastitis in Japan / K. Kawai, H. Higuchi, H. Iwano [et al.] // Anim. Sci. J. — 2014. — Vol. 85, №1,— Р. 96—99. DOI: 10.1111/asj.12144. Epub 2013 Nov 21.

15. Kong, L. C. Antimicrobial susceptibility and molecular characterization of macrolide resistance of Mycoplasma bovis isolates from multiple provinces in China / L. C. Kong, D. Gao, B.Y. Jia J. [et al.] // Vet. Med. Sci. — 2016. — Vol.78, №2. — Р. 293—296. DOI: 10.1292/jvms.15-0304. Epub 2015 Sep 7.

16. Amram, E. 16S rRNA gene mutations associated with decreased susceptibility to tetracycline in Mycoplasma bovis. /E. Amram, I. Mikula, C. Schnee [et al.]// Antimicrob Agents Chemother. — 2015. — Vol.59, №2. — Р. 796—802. DOI: 10.1128/AAC.03876-14. Epub 2014 Nov 17.

17. Changes in antimicrobial susceptibility profiles of Mycoplasma bovis over time / H.Y. Cai, R. McDowall, L. Parker [et al.] // Canadian J. Veterinary Research. — 2019. — Vol. 83. — P. 34—41.

18. Gerchman, I. In vitro antimicrobial susceptibility of Mycoplasma bovis isolated in Israel from local and imported cattle. /I. Gerchman, S. Levisohn, I. Mikula, I. Lysnyansky // Vet Microbiol. — 2009. — Vol.137, №3—4. — Р. 268—275. DOI: 10.1016/j.vetmic.2009.01.028. Epub 2009 Jan 24.

19. Acquired resistance to the 16-membered macrolides tylosin and tilmicosin by Mycoplasma bovis / U. Lerner, E. Amram, R. D. Ayling [et al.] // Vet Microbiol. — 2014. — Vol.168, №2—4. — Р. 365—371. DOI: 10.1016/j.vetmic.2013.11.033. Epub 2013 Dec 14.

20. Mutations Associated with Decreased Susceptibility to Seven Antimicrobial Families in Field and Laboratory—Derived Mycoplasma bovis Strains / K. M. Sulyok, Z. Kreizinger, E. Wehmann [et al.] // Antimicrob. Agents Chemother. — 2017. — Vol.61, №2: e01983—16. DOI: 10.1128/AAC.01983—16.

21. Razin, A. Methylated bases in mycoplasmal DNA. /A. Razin, S. Razin// Nucleic Acids Res. — 1980. — Vol.25, № 6. — Р. 1383—1390. DOI: 10.1093/nar/8.6.1383.

22. Redgrave, L. S. Fluoroquinolone resistance: mechanisms, impact on bacteria, and role in evolutionary success / L. S. Redgrave, S. B. Sutton, M. A. Webber, L. J. Piddock// Trends Microbiol. — 2014. — Vol.22, №8. — Р. 438—445. DOI: 10.1016/j.tim.2014.04.007.

23. Khalil, D. Alterations in the Quinolone Resistance—Determining Regions and Fluoroquinolone Resistance in Clinical Isolates and Laboratory-Derived Mutants of Mycoplasma bovis: Not All Genotypes May Be Equal. / D. Khalil, C. A. M. Becker, F. Tardy// Appl. Environ. Microbiol. — 2015. — Vol.82, №4. — Р. 1060—1068. DOI: 10.1128/AEM.03280-15.

24. Mutations in 23S rRNA gene associated with decreased susceptibility to tiamulin and valnemulin in Mycoplasma gallisepticum / B. B. Li, J. Z. Shen, X. Y. Cao [et al.]// FEMS Microbiol Lett. 2010. — Vol.308, №2/ — P. 144-149. DOI: 10.1111/j.1574—6968.2010.02003.x.

25. Красиков, А. П. Микоплазмозы человека и животных их эпидемиологическое и эпизоотологическое значение / А. П. Красиков, Н. В. Рудаков. — Омск: ООО ИЦ «Омский научный вестник», 2015. — 717 с.

26. Алхуссен, М. А. Молекулярно-биологические методы диагностики микоплазмозов крупного рогатого скота: Автореф. дисс. ... канд. вет. наук: 4.2.3 / М. А. Алxуссен; ФГБУ «ВНИИЗЖ». — Владимир, 2023. — 23 с.

27. Edwards, D. J. Beginner’s guide to comparative bacterial genome analysis using next-generation sequence data / D. J. Edwards, K. E. Holt // Microbial Informatics and Experimentation. — 2013. — № 1(3). — P. 1—9.