Динамика изменения уровня экспрессии генов ESR2 и PTHLH в процессе постэмбрионального развития репродуктивной системы кур

Переход от классической к геномной селекции имеет стратегическое значение для птицеводства РФ. Особое значение для продуктивности имеют гены, вовлеченные в регуляцию репродуктивной системы. Целью исследования являлся анализ динамики уровня экспрессии генов ESR2 и PTHLH в тканях яичника кур исходной линии СМ9 кросса «Смена 9» на ключевых этапах постэмбрионального развития. Материалом исследования служили ткани яичника, отобранные у разновозрастных групп птиц. Оценку относительного уровня экспрессии генов проводили в тканях яичника птицы четырёх возрастных групп методом количественной ПЦР в реальном времени с использованием метода ΔCt. Экспрессия гена ESR2 в яичнике существенно варьировалась. Максимальный уровень активности зафиксирован в фазах постнатальной адаптации (2-я неделя) и активации яичников (10-я неделя). С началом пубертата экспрессия планомерно снижалась, достигая минимума к фазе активной яйцекладки на 27-й неделе. Динамика PTHLH была более плавной: стабильная экспрессия в ранние периоды развития сменилась достоверным снижением активности исключительно на этапе активной яйцекладки. Регуляция экспрессии генов ESR2 и PTHLH носит стадийно-специфический характер. Высокая активность генов на ранних этапах обеспечивает морфогенез фолликулов. Последующее снижение транскрипции физиологически сопряжено с началом яйцекладки. Выявленные гены, влияющие на развитие репродуктивной системы кур, целесообразно использовать как кандидаты для изучения однонуклеотидных полиморфизмов в рамках ведения работ по маркер-ассоциированной селекции.

1. Горбаков М. Е., Голодяева М. С., Березкин В. А. Тенденции развития птицеводческой отрасли в Российской Федерации. Нормативно-правовое регулирование в ветеринарии 2025;(2):26—30. DOI: 10.52419/issn2782-6252.2025.2.26.

2. Фисинин В. И. Динамика и перспективы развития мирового и отечественного птицеводства. Результаты работы яичного и мясного птицеводства России в 2024 году. Птицеводство 2025;(3):4—10. EDN: IGUKIC.

3. Столповский Ю. А., Пискунов А. К., Свищева Г. Р. Геномная селекция. I. Последние тенденции и возможные пути развития. Генетика 2020;56(9):1006—1017.

4. Гальперн И. Л., Синичкин В. В., Станишевская О. И., Бычаев А. Г. Селекционно-генетические методы и программы выведения новых линий и создания конкурентоспособных кроссов яичных и мясных кур. СПб -Павловск: ООО «СПб СРП «Павел» ВОГ»; 2010. 164 с.

5. Zhao J, et al. Interacting networks of the hypothalamicpituitary-ovarian axis regulate layer hens performance. Genes. 2023;14(1):141.

6. Hlokoe V. R., Tyasi T. L., Gunya B. Chicken ovarian follicles morphology and growth differentiation factor 9 gene expression in chicken ovarian follicles. Heliyon. 2022;8(1).

7. Mishra B., Sah N., Wasti S. Genetic and hormonal regulation of egg formation in the oviduct of laying hens. In: Poultry-an advanced learning. IntechOpen; 2019.

8. Лаптев Г. Ю. и др. Результаты создания каталога прогностических генов-маркеров репродуктивного долголетия яичной птицы.

9. Niu X., Tyasi T. L., Qin N., Liu D., Zhu H., Chen X., et al. Sequence variations in estrogen receptor 1 and 2 genes and their association with egg production traits in Chinese Dagu chickens.

10. Коршунова Л. Г. и др. Ассоциации однонуклеотидных замен в генах-кандидатах с хозяйственно полезными признаками у кур (Gallus gallus domesticus L.) (обзор). Сельскохозяйственная биология 2023;58(2):205—222.

11. Bai J., Fan H. D., Lu X. Association analysis between ESR gene and egg production performance of laying quails. Brazilian Journal of Poultry Science. 2023;25(4):eRBCA-2022-1706.

12. Ma Y., et al. Identifying artificial selection signals in the chicken genome. PLoS One. 2018;13(4):e0196215.

13. Sinclair-Black M., Garcia R. A., Ellestad L. E. Physiological regulation of calcium and phosphorus utilization in laying hens. Frontiers in Physiology. 2023;14:1112499.

14. Martin T. J. Parathyroid hormone-related protein, its regulation of cartilage and bone development, and role in treating bone diseases. Physiological Reviews. 2016;96(3):831—871.

15. LaVoie H. A., King S. R. Transcriptional regulation of steroidogenic genes: STARD1, CYP11A1 and HSD3B. Experimental Biology and Medicine. 2009;234(8):880—907.

16. Yazawa T., et al. Transcriptional regulation of ovarian steroidogenic genes: recent findings obtained from stem cellderived steroidogenic cells. BioMed Research International. 2019;2019:1–13.

17. Pinheiro P. L., et al. Functional characterization and evolution of PTH/PTHrP receptors: insights from the chicken. BMC Evolutionary Biology. 2012;12(1).