Концентрация антимюллерова гормона в сыворотке крови северных оленей в зависимости от уровня половых гормонов
https://doi.org/10.52419/issn2072-2419.2023.4.438
Аннотация
Северное оленеводство – ведущая отрасль сельского хозяйства для регионов Крайнего Севера. Северный олень (Rangifer tarandus) остается малоизученным с точки зрения генетики и репродукции, что сдерживает интенсификацию развития отрасли. Активно ведутся исследования в области генетики продуктивных качеств северного оленя, а формирование и функционирование его репродуктивной системы мало изучены. Гормональная регуляция репродуктивного процесса и формирование гормонального статуса на ключевых этапах репродуктивного цикла является значимым аспектом воспроизводства животных. Северный олень характеризуется резко выраженной сезонностью размножения и изучение гормональной регуляции репродуктивного цикла является главным аспектом дальнейшего использования вспомогательных репродуктивных технологий. Работа посвящена анали зу уровня антимюллерова гормона у важенок в период размножения. Исследования проводились на северных оленях хозяйства МАУ «Дирекция Территории традиционного природопользования сойотов», Бурятия, (важенки, n=29). Исследована зависимость концентрации антимюллерова гормона (АМГ), являющегося общепризнанным показателем овариального резерва самки, от концентрации половых гормонов (прогестерона, эстрадиола, тестостерона и лютеинизирующего гормона) в сыворотке крови важенок. Уровень гормонов выявляли методом иммуноферментного анализа. Было выявлено более высокое содержание половых гормонов – тестостерона, эстрадиола, прогестерона и лютеинизирующего гормона в группе важенок с концентрацией АМГ >1 нг/мл, чем у важенок с концентрацией АМГ <1 нг/мл. Достоверность различий по прогестерону составила p<0,05, а по эстрадиолу – p<0,001. Низкая концентрация АМГ (<1 нг/мл), характеризующая пониженный овариальный резерв самок северного оленя, соответствует пониженной концентрации половых гормонов, поддерживающих репродуктивную функцию, и, наоборот, высокой концентрации АМГ (>1 нг/мл), и, соответственно, высокому овариальному резерву соответствует повышенная концентрация половых гормонов, – тестостерона, эстрадиола, прогестерона и лютеинизирующего гормона.
Ключевые слова
Об авторах
А. А. КрутиковаРоссия
канд. биол. наук, ст. науч. сотр. лаб. молекулярной генетики
Е. В. Никиткина
Россия
канд. биол. наук, вед. науч. сотр. лаб. биологии развития
Г. В. Ширяев
Россия
канд. с.-х. наук, ст. науч. сотр. группы биохимиии
Г. К. Пегливанян
Россия
мл. науч. сотр. лаб. молекулярной генетики
А. А. Мусидрай
Россия
канд. биол. наук, вед. науч. сотр. отд. жив-ва и рац. природопользования Арктики
Г. С. Никитин
Россия
канд. ветеринар. наук, доц. каф. генетических и репродуктивных биотехнологий
Список литературы
1. Лайшев К. А. Проблемы профилактики бруцеллеза северных оленей и пути их решения / К. А. Лайшев, В. А. Забродин, А. В. Прокудин, Н. В. Винокуров, Е. С. Слепцов // Генетика и разведение животных. – 2018. – № 1. – С. 37-45.
2. Lindeberg H. Potential applications of assisted reproductive technologies (ART) in reindeer (Rangifer tarandus) / H. Lindeberg, E. Nikitkina, No. Nagy, A. Musidray, G. Shiryaev, J. Get together, Ø. Holland // Animal Reproduction Science. – 2021. – Vol. 235, doi:10.1016/j.anireprosci.2021.106890.
3. Никиткина Е. В. Оценка качества спермы северных оленей (rangifer tarandus) с помощью CASA / Е. В. Никиткина, К. В. Племяшов, А. А. Крутикова, С. В. Тимофеева, Г. В. Ширяев, А. А. Мусидрай, В. В. Гончаров, О. К. Сергеева // Ветеринария. – 2018. – № 7. – С. 14-17.
4. Никиткина Е. В. Репродуктивные технологии в оленеводстве: проблемы и перспективы использования (обзор) / Е. В. Никиткина, В. В. Гончаров, А. А. Крутикова, О. К. Сергеева, А. А. Мусидрай, К. В. Племяшов // Генетика и разведение животных. – 2017. – № 1. – С. 9-14.
5. Trondrud L. M. Stress responses to repeated captures in a wild ungulate / L. M. Trondrud, C. Ugland, E. Ropstad, L. E. Loe, S. Albon, A. Stien, A. L. Evans, P. M. Thorsby, V. Veiberg, R. J. Irvine, G. Pigeon // Sci Rep. – 2022. – № 12(1). – P. 16289. doi: 10.1038/s41598-022-20270-z.
6. Baksi S. N. Plasma calcemic hormones in mature female reindeer, Rangifer tarandus / S. N. Baksi, J. W. Newbrey // Gen Comp Endocrinol. – 1988. – № 69(2). – P. 262-266, doi:10.1016/0016-6480(88)90014-7.
7. Nikitkina E. Hormone levels in reindeer during estrus stimulation at the beginning of breeding season / E. Nikitkina, V. Goncharov // Reprod. Domest. Anim. – 2015. – № 50. – P. 68-69, doi:10.1111/rda.12581.
8. Федотов С. B. Определение репродуктивного потенциала у ремонтных телок / С. B. Федотов, Е. Е. Олейникова, С. Г. Яковлев, Е. А. Муха // Генетика и разведение животных. – 2020. – № 4. – С. 43-47, doi:10.31043/2410-2733-2020-4-43-47.
9. Josso N. Anti-Müllerian hormone and its receptors / N. Josso; N. di Clemente; L. Gouédard // Mol. Cell. Endocrinol. – 2001. – № 179. – P. 25-32.
10. Устинкина Т. И. Антимюллеров гормон в дифференцировке, развитии и функции репродуктивной системы / Т. И. Устинкина, С. Б. Шустов // Проблемы эндокринологии. – 2011. – № 6. – С. 39-44.
11. Pellatt L. Anti-Mullerian hormone and polycystic ovary syndrome: a mountain too high? / L. Pellatt, S. Rise, H. Mason // Reproduction. – 2010. – № 39: 5. – P. 825-833.
12. Grossman M. Miillerian inhibiting substance inhibits cytochrome P450 aromatase activity in human granulosa lutein cell culture / M. Grossman, S. Nakajima, M. Fallat, Y. Siow // Fertility and Sterility. – 2008. – Vol. 89. – P. 1364-1370.
13. Kang An. Potential Role of Anti-Müllerian Hormone in Regulating Seasonal Reproduction in Animals: The Example of Males / Kang An, Baohui Yao, Yuchen Tan, Yukun Kang, Junhu Su / Int. J. Mol. Sci. – 2023. – № 24(6). – 5874, doi: 10.3390/ijms24065874.
14. Белоцерковцева Л. Д. Антимюллеров гормон как фактор, определяющий качество ооцита и исход программ вспомогательных репродуктивных технологий / Л. Д. Белоцерковцева, Л. В. Коваленко, В.В. Данилогорская, Е.В. Бондарева // Вестник СурГУ. Медицина. – 2012. – № 2 (12). – С. 20-23.
15. Скриганюк А. А. Антимюллеров гормон / А. А. Скриганюк, А. Н. Харламова // Universum: медицина и фармакология. – 2019. – № 1 (56). – С. 16-18.
16. Богданова П. С. Антимюллеров гормон (АМГ) у девочек-подростков с гиперандрогенией / П. С. Богданова, М. А. Карева, И. С. Яровая, О. А. Злотникова, А. В. Ильин, И. И. Дедов // Проблемы эндокринологии. – 2012. – № 1. – С. 9-16.
17. Van Helden J. Has GnRH a direct role in AMH regulation / J. Van Helden, O. Evliyaoglu, R. Weiskirchen // Clin Endocrinol. – 2019. – № 90(6). – P. 827-833, doi: 10.1111/cen.13967.
18. Su H. I. The impact of depot GnRH agonist on AMH levels in healthy reproductive-aged women / H. I. Su, K. Maas, P. M. Sluss, R. J. Chang, J. E. Hall, H. Joffe // J Clin Endocrinol Metab. – 2013. – № 98(12). – E1961–E1966, doi: 10.1210/jc.2013-2410.
19. Cimino I. Novel role for anti-Müllerian hormone in the regulation of GnRH neuron excitability and hormone secretion / I. Cimino, F. Casoni, X. Liu, et al. Nat Commun. – 2016. – № 7. – 10055, doi: 10.1038/ncomms10055.
20. Pellatt L. Granulosa cell production of anti-Müllerian hormone is increased in polycystic ovaries / L. Pellatt, L. Hanna, M. Brincat, et al. J Clin Endocrinol Metab. – 2007. – № 92(1). – P. 240-245, doi: 10.1210/jc.2006-1582.
Рецензия
Для цитирования:
Крутикова А.А., Никиткина Е.В., Ширяев Г.В., Пегливанян Г.К., Мусидрай А.А., Никитин Г.С. Концентрация антимюллерова гормона в сыворотке крови северных оленей в зависимости от уровня половых гормонов. Международный вестник ветеринарии. 2023;(4):438-446. https://doi.org/10.52419/issn2072-2419.2023.4.438
For citation:
Krutikova A.A., Nikitkina E.V., Shiriaev G.V., Peglivanian G.K., Musidray A.A., Nikitin G.S. The concentration of anti-muller hormone in the blood serum of reindeer depends on the level of sex hormones. International Journal of Veterinary Medicine. 2023;(4):438-446. (In Russ.) https://doi.org/10.52419/issn2072-2419.2023.4.438