Лечение экспериментального септического артрита цыплят, вызванного золотистым стафилококком

Решение проблемы септического артрита птиц, вызванного Staphylococcus aureus, является серьезной задачей для современного птицеводства. Было проведено исследование эффективности применения антимикробных препаратов из разных групп при лечении цыплят двухнедельного возраста, зараженных с исследовательской целью. В первом опыте установлена эффективность флорфеникола, офлоксацина и комбинированного препарата, в состав которого входят ципрофлоксацин и апрамицин (100+500 мг/г), при выпаивании цыплятам с водой за сутки до заражения. Флорфеникол и офлоксацин назначались в дозах 300; 200; 100 и 50 мг/л, а комбинированный препарат – 200; 100; 50 и 25 мг/л воды (по ципрофлоксацину). Во втором опыте изучалась эффективность тилмикозина, назначаемого с водой в дозах 500; 250; 125 и 62,5 мг/л одновременно с заражением. Для заражения цыплят использована патогенная культура S. aureus. Суспензию возбудителя вводили внутрибрюшинно из расчёта 300 миллионов микробных тел в 0,5 мл 0,9% раствора NaCl (№2 по шкале мутности MсFarland) на цыпленка. Наблюдение за птицами вели в течение 20 дней, учитывая их заболеваемость и смертность. Установлено, что при лечении цыплят, начатом за сутки до заражения, наиболее эффективно применение флорфеникола, и, в меньшей степени, комбинированного препарата на основе ципрофлоксацина и апрамицина. В этом случае обеспечивалась сохранность от 84 до 96% зараженных цыплят. Назначение офлоксацина с водой за сутки до заражения цыплят не имело практического значения, так как независимо от дозы препарата наблюдались высокие заболеваемость и смертность животных, соответствующие или превышающие таковые в контрольной группе. Назначение тилмикозина с водой одновременно с заражением цыплят показало умеренную эффективность в средних и низких дозах (125 и 62,5 мг/л). Однако, при этом наблюдалась высокая смертность поголовья, а количество переболевших достигало 56%.

1. Балбуцкая А.А. Биологические свойства Staphylococcus aureus, выделенного от больной артритом птицы / А.А. Балбуцкая, В.Н. Скворцов / Ветеринарный врач. – 2019. – №1. – С. 28-33. DOI: 10.33632/1998-698X.2019-1-28-33.

2. ГОСТ 34088-2017. Руководство по содержанию и уходу за лабораторными животными. Правила содержания и ухода за сельскохозяйственными животными. М., 2018. – 30 с.

3. Белимова С.С., Скворцов В.Н., Моисеева А.А., Лаишевцев А.И., Степанова Т.В., Дроздова Е.И. Изучение эффективности левофлоксацина при экспериментальном стафилококкозе цыплят // Ветеринария и кормление. – 2023. – №4. – С.4-6. DOI: 10.30917/ATT-VK-1814-9588-2023-4-1.

4. Andreasen CB. 2020. Staphylococcosis. In: Swayne DE, editor. Diseases of poultry. 14 th ed. Hoboken (NJ): John Wiley & Sons, Ltd; – p. 995–1003.

5. Benrabia I, Hamdi TM, Shehata AA, Neubauer H, Wareth G. 2020. Methicillinresistant Staphylococcus aureus (MRSA) in poultry species in Algeria: long-term study on prevalence and antimicrobial resistance. Vet Sci. 7(2): 54.

6. Huang JG, Hu XY, Cheng GF, Zhou SQ, Song NH (2002). The diagnosis of Staphylococcus arthritis in breeding broilers. J. Hubei Agri. Sci. 3(4): 78–79.

7. Jackson C.R., Davis J.A., Barrett J.B. Prevalence and characterization of methicillin-resistant Staphylococcus aureus isolates from retail meat and humans in Georgia. J. Clin. Microbiol. 2013; 51:1199–1207. doi: 10.1128/JCM.03166-12.

8. Merck S, Corp D (2011). The Merck’s Veterinary Manual, Staphylococcosis introduction and zoonotic risk. Pp. 75–80.

9. National Research Council (US) Institute for Laboratory Animal Research. Guidance for the Description of Animal Research in Scientific Publications. Washington (DC): National Academies Press (US); 2011. PMID: 22379656.

10. Parte AC, Sardà Carbasse J, MeierKolthoff JP, Reimer LC, Göker M. 2020. List of Prokaryotic names with Standing in Nomenclature (LPSN) moves to the DSMZ. Int J Syst Evol Microbiol. 70(11):5607–5612. (Accessed on 20 November 2021).

11. Rodgers JD, McCullagh JJ, McNamee PT, Smyth JA, Ball HJ. 1999. Comparison of Staphylococcus aureus recovered from personnel in a poultry hatchery and in broiler parent farms with those isolated from skeletal disease in broilers. Vet Microbiol. 69 (3):189–198.

12. Syed MA, Ullah H, Tabassum S, Fatima B, Woodley TA, Ramadan H, Jackson CR. 2020. Staphylococci in poultry intestines: a comparison between farmed and household chickens. Poult Sci. 99(9): 4549–4557.

13. Wijesurendra DS, Chamings AN, Bushell RN, Rourke DO, Stevenson M, Marenda MS, Noormohammadi AH, Stent A. 2017. Pathological and microbiological investigations into cases of bacterial chondronecrosis and osteomyelitis in broiler poultry. Avian Pathol. 46(6):683–694.

14. World Organization for Animal Health. 2018. Chapter 1.1.4. Biosafety and biosecurity: Standard for managing biological risk in the veterinary laboratory and animal facilities, http://www.oie.int/fileadmin/Home/eng/Health_standards/tahm/1.01.04_BIOSAFETY_BIOSECURITY.pdf [accessed on February 27, 2019].