Сравнительный анализ биохимического состава сыворотки крови радужной форели при различных рационах кормления

Рациональное и эффективное кормление объектов аквакультуры относится к одной из основ производства продукции при высокопродуктивном рыбоводстве. Целью выполненного исследования стало сравнение состава продукционных комбикормов для объектов аквакультуры и изучение влияния комбикормов на биохимические показатели сыворотки крови радужной форели. Для выполнения цели исследования отобрано 10 групп радужной форели (Parasalmo mykiss (Walbaum, 1792) породы «Рофор»), выращенной в производственных условиях садковых хозяйств Карелии. В сыворотке крови исследуемых особей определяли аланинтрансферазу аспартатаминотрансферазу, щелочную фосфатазу, общий белок, альбумины, креатинин, мочевину, глюкозу, общий билирубин и общий холестерин. Полученный результат имеет важное практическое значение поскольку при избыточном поступлении углеводов у этих рыб развивается синдром перегрузки печени гликогеном из-за недостаточного продуцирования инсулина. Поэтому оптимальное содержание углеводов для них составляет 20–30 %, в том числе клетчатки 5–6 %. При этом лучше используются моносахара – глюкоза, фруктоза, манноза, несколько хуже – дисахариды и крахмал, а целлюлоза расщепляется только на 10–20 % от потребленной. Кроме того, необходимо учитывать, что форель как холоднолюбивая рыба не может использовать углеводы в том объеме, как теплолюбивые объекты аквакультуры поэтому в целях сбережения белка, который может использоваться на энергетические цели в их рационы необходимо дополнительно вводить жиры. Однако, в исследуемых комбикормах данный компонент не соответствовал нормативам ГОСТа. Результаты выполненных исследований могут быть использованы для оптимизации состава продукционных комбикормов для радужной форели и регистрации фоновых ихтиогематологических критериев качества содержания высокопродуктивных аквакультурных видов.

1. Aquaculture Europe, 2004. «Biotechnology for quality». October 20-23. European aquaculture society. Special publication N 34. Barcelona, Spain. 885p.

2. Aquaculture Europe, 2005. August 5-9. European aquaculture society. Special publication N 35. Trondheim, Norway. 836 p.

3. World Aquaculture, 2005. Bali-Indonesia. 796 p.

4. World Aquaculture, 2006. Highest quality for the contsumer. May 9-13. Florence, Italy. 1068 p.

5. Гамыгин Е. А., Пономарев С. В., Канидьев А. Н., Щербина М. А. Методические указания по кормлению рыб новыми комбикормами, выпускаемыми предприятиями Минрыбхоза СССР. М.: ВНИИПРХ, 1990. 45 с.

6. Гамыгин Е. А., Щербина М. А., Передня А. А. Итоги работ по созданию новых кормов для ценных объектов аквакультуры // Вестник АГТУ, 2004. № 2(21). Астрахань: АГТУ. С. 55-60.

7. Щербина М. А., Гамыгин Е. А. Кормление рыб в пресноводной аквакультуре. М.: Изд-во ВНИРО, 2006. 364 с.

8. Гамыгин Е.А., Лысенко В.Я., Скляров В.Я., Турецкий В.И. Комбикорма для рыб: производство и методы кормления. М.: Агропромиздат, 1989. 168 с.

9. Сидоров В.С. Экологическая биохимия рыб. Липиды. Л.: Наука, 1983. С. 18 –37.

10. Сорвачев К.Ф. Основы биохимии питания. М.: Легкая и пищевая промышленность, 1982. 246 с.

11. Пегель В.А. Физиология пищеварения рыб. Томск: ТГУ, 1950. 200 с

12. Pizzagalli M. D., Bensimon A., SupertiFurga G. A guide to plasma membrane solute carrier proteins // FEBS J. 2021. № 288. Р. 2784–2835. doi: 10.1111/febs.15531.

13. Khan Y. M., Khan M. A. Optimization of dietary pyridoxine improved growth performance, he-matological indices, antioxidant capacity, intestinal enzyme activity, nonspecific immune re-sponse and liver pyridoxine concentration of fingerling major carp, Catla catla (Hamilton) // Aq-uaculture. 2021. № 541. Р. 736815. DOI: 10.1016/j.aquaculture.2021.736815.

14. Fazio F. Fish hematology analysis as an important tool of aquaculture: a review // Aquaculture. 2019. № 500. Р. 237-242.

15. Seibel H., Baвmann B., Rebl A. Blood will tell: What hematological analyses can reveal about fish welfare // Front. Vet. Sci. 2021. №8. DOI: 10.3389/fvets.2021.616955.

16. Clauss T.M., Dove A.D., Arnold J.E. Hematologic disorders of fish // Vet. Clin. North. Am. Exot. Anim. Pract. 2008. № 11. Р. 445-462.

17. Davies A. J., Johnston M.R.L. The biology of some intraerythrocytic parasites of fishes, amphibia and reptiles // Adv. Parasitol. 2000. № 45. Р. 101-107.

18. Woo P.T.K. Cryptobia (Trypanoplasma) salmositica and salmonid cryptobiosis // J. Fish Dis. 2003. № 26. Р. 627-646.

19. Улитько В. Е., Ульянова М. В. Физиолого-биохимический статус крови карповых рыб при кормлении комбикормом с пре- и пробиотической добавкой «Биокоретрон форте» // Вестник Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии. 2015. № 3 (31). С. 100-103.

20. Гапонов Н. В. Влияние люпина белого на биохимические показатели крови радужной форели // Ветеринария. 2023. № 2. С. 46-52.

21. Поддубная И.В. Влияние органического йода на биохимические показатели крови товарной радужной форели в условиях индустриального рыбоводства // Основы и перспективы органических биотехнологий. 2019. № 2. С. 24-27.

22. Селиванова И. Р., Хайрулина Т. П., Глебова И. А., Головачева Н. А., Шиллерова А. Н. Сравнительная характеристика кормов по биохимическим показателям сыворотки крови Oncorhynchus mykiss (Walbaum, 1792) // Водные биоресурсы и среда обитания. 2023. Т. 6., № 2. С. 51–59.

23. Ахметова, В.В. Физиология рыб: учебно-методическое пособие. Часть 2 /В.В. Ахметова, Н.А. Любин, С.В. Дежаткина. - Ульяновск: УГСХА, 2015. 224 с.

24. De Pedro N., Guijarro A. E., LopezPatinoM. A., Marinez-Alvarez R. and Delgado M. Daily and seasonal variation in hematological and blood biochemical parameters in trench Tinca tinca // Aquaculture Research, 2005. 36, 85– 96.

25. Hughes G. M., Nemcsok J. Effects of low pH alone and combined with copper sulphate on blood parameters of rainbow trout // Environmental Pollution, 1988. № 55. Р. 89-95.

26. Yanik T., Atamanalp M. Introduction to water pollution in fish farming // The Publications of Agricultural College, 1st ed., Erzurum, 2001. Р. 322, Turkey, (in Turkish).

27. ГОСТ 10385-2014. Комбикорма для рыб. Общие технические условия.

28. Методические указания по проведению гематологического обследования рыб, утверждённые Минсельхозпродом России 02.02.1999 № 13-4-2/1487.

29. Пищенко Е. В. Гематология пресноводных рыб: Учеб. пособие. Новосибирск: Новосиб. Гос. аграр. ун-т. 2003. 48 с.

30. Зубрихина Г. Н., Блиндарь В. Н., Тимофеев Ю. С. Теория и практика лабораторных гематологических исследований: учебник. М.: ГЭОТАРМедиа, 2020. - 288 с.

31. Меньшиков, В. В. Клинический диагноз — лабораторные основы. / В.В. Меньшиков – М.: Изд-во "Лабинформ", 1997.- 320 с.

32. Руководство по современным биохимическим методам исследования водных экосистем, перспективных для промысла и марикультуры. - М.: Изд-во ВНИРО, 2004. -123 с.

33. Шеховцева Н. В. Экология водных микроорганизмов: методические указания. - Ярославль: Яросл. гос. ун-т им. П. Г. Демидова, 2011. - 84 с.

34. Ивантер Э. В. Основы вариационной статистики. – Петрозаводск: Изд-во Петрозаводского государственного университета им. О. В. Куусинена, 1970.– 19 с.

35. Мхитарян В.С., Ильенкова С.Д., Агапова Т.Н. Статистика. – М.: Юрайт, 2013. – 590 с.

36. Шелухин Г.К. Физиолого-биохимические параметры осетровых в морской и речной периоды жизни. Автореф. дисс. … канд. биол. наук. Петрозаводск: Изд-во Петрозаводского Государственного Университета, 1974. - 19 с.