Гематологические показатели крови у оседлой популяции арктического гольца Salvenius alpinus L. (Salmoniformes) при паразитоценозах

Данная работа отражает результаты исследования половозрелых особей арктического гольца (Salvelinus alpinus L.) из озера Улу, расположенного в Оймяконском районе Республики Саха (Якутия). Исследование проведено в результате контрольного отлова, было выловлено пятьдесят две особи арктического гольца. У каждой рыбы измеряли следующие показатели: стандартная длина (SL), масса тела, возраст рыбы по чешуе и отолитам. Также оценивали состояние зрелости гонад и содержимое кишечника. Учет микроскопических паразитов осуществляли путем микроскопирования серий компрессионных препаратов биоматериала в проходящем свете, при помощи микроскопа Bressr LSd5-005 (Bresser Ltd, Китай). Количество обнаруженных в каждой особи макроскопических паразитов, каждого вида регистрировали. Измерение размерно-массовых показателей и ихтиопатологическое исследование гольца выявили существенную паразитарную нагрузку, негативно влияющую на темпы роста и состояние популяции данного вида рыб. Менее половины (42,8%) исследованных особей были свободны от паразитов. Паразитоценоз был представлен двумя видами нематод (Cystidicola farionis, Raphidascaris acus), цестодой (Proteocephalus thymalli) и скребнем (Neoechinorhynchus salmonis). Наибольшая численность паразитов была выявлена в органах ЖКТ исследованных рыб. Гематологические показатели крови рыб без инвазии и инвазированных особей демонстрировали достоверные (p <0.05) различия встречаемости лимфоцитов (снижение у инвазированных особей), нейтрофилов (увеличение до 16.9±2.0% у инвазированных) и базофилов (увеличение до 1.9% у инвазированных). Полученные результаты диагностики и паразитологического состояния популяции гольца, характеризующейся низкой скоростью роста и малой встречаемостью старших возрастных групп, свидетельствуют о возможности повышения рыбопродуктивности водоема путем подавления паразитофауны.

1. Алексеев С. С. и др. Три симпатрические формы арктического гольца Salvelinus alpinus complex (Salmoniformes, Salmonidae) из озера Камканда, северное Забайкалье //Вопросы ихтиологии. – 2014. – Т. 54. – №. 4. – С. 387-387.

2. Анохина В. С., Квасоварова А. Н., Щербак К. С. Характеристика крови и гистология половых желез заводского и дикого гольца озерного //Вестник Мурманского государственного технического университета. – 2012. – Т. 15. – №. 4. – С. 691-700.

3. Быховская-Павловская И.Е. Паразиты рыб: руководство по изучению. – Л.: Наука, 1985. – 123 с.

4. Иванова Н. Т. Атлас клеток крови рыб: сравнительная морфология и классификация форменных элементов крови рыб. – Легкая и пищевая промышленность, 1983. – 283 с.

5. Кириллов Ф.Н. Рыбы Якутии. М.: Наука, 1972, 360 с.

6. Кириллов А.Ф. Промысловые рыбы Якутии. – М.: Научный мир, 2002.

7. Королева И. М. Гематологические показатели сига обыкновенного Coregonus lavaretus в водоёмах Кольского севера // Труды ВНИРО. – 2016. – Т. 162. – С. 36-45.

8. Маркевич Г. Н., Есин Е. В. Эволюция гольцов рода Salvelinus (Salmonidae). 2. Симпатрическая внутриозёрная диверсификация (экологические черты и эволюционные механизмы с примерами из разных групп рыб) //Вопросы ихтиологии. – 2018. – Т. 58. – №. 3. – С. 292-312.

9. Правдин, И. Ф. Руководство по изучению рыб (Преимущественно пресноводных) – Москва: Пищевая промышленность, 1966. – 376 с.

10. Пронина Г. И. и др. Влияние Ронколейкина на морфометрические и гематологические показатели и фагоцитарную активность нейтрофилов арктического гольца //Известия Тимирязевской сельскохозяйственной академии. – 2023. – Т. 1. – №. 1. – С. 110-120.

11. Решетников Ю. С. и др. Список рыбообразных и рыб пресных вод России // Вопросы ихтиологии. – 1997. – Т. 37. – №. 6. – С. 723-771.

12. Трофимова Т. П. и др. Современное состояние озер бассейна реки Яны // Вестник Северо-Восточного федерального университета им. МК Аммосова. Серия: Науки о Земле. – 2018. – №. 2. – С. 32-40.

13. Шеина, Т. А., Костицына, Н. В., Бакланов, М. А. Гематологические показатели и паразитофауна ротана Perccottus Glenii моновидового ихтиоценоза малого городского водоема // Вестник Пермского университета. Серия Биология. – 2020. – № 3. – С. 227–235.

14. Alekseyev S. S. et al. 2002. Diversification, sympatric speciation, and trophic polymorphism of Arctic charr, Salvelinus alpinus complex, in Transbaikalia // Ecology, behaviour and conservation of the charrs, genus Salvelinus. P. 97-114.

15. Bush A.O., Lafferty K.D., Lotz J.M., & Shostak A.W. 1997. Parasitology meets ecology on its own terms: Margolis et al. revisited // J. Parasitol. V. 83. № 4. P. 575–583. https://doi.org/10.2307/3284227.

16. Bystriansky J. S., LeBlanc P. J., & Ballantyne J. S. 2006. Anaesthetization of Arctic charr Salvelinus alpinus (L.) with tricaine methanesulphonate or 2‐phenoxyethanol for immediate blood sampling // Journal of fish biology. V. 69. № 2. P. 613-621. https://doi.org/10.1111/j.1095-8649.2006.01118.x

17. FAO. Global Production [Электронный ресурс] // Fisheries and Aquaculture / Food and Agriculture Organization of the United Nations. – 2022. – URL: https://www.fao.org/fishery/en/collection/global_production?lang=en

18. Fijan N. Morphogenesis of blood cell lineages in channel catfish. Journal of fish biology. 2002;60(4):999-1014. https://doi.org/10.1111/j.1095-8649.2002.tb02424.x

19. Jonsson B., Jonsson N. Polymorphism and speciation in Arctic charr //Journal of Fish Biology. – 2001. – Т. 58. – №. 3. – С. 605-638.

20. Hofer R. et al. Seasonal changes in blood cells of Arctic char (Salvelinus alpinus L.) from a high mountain lake //Aquatic sciences. – 2000. – Т. 62. – С. 308-319.

21. Klemetsen A. The charr problem revisited: exceptional phenotypic plasticity promotes ecological speciation in postglacial lakes //Freshwater Reviews. – 2010. – Т. 3. – №. 1. – С. 49-74.

22. Kondera E. Haematopoiesis in the head kidney of common carp (Cyprinus carpio L.): a morphological study //Fish physiology and biochemistry. 2011. Т. 37. С. 355-362.

23. Lahnsteiner F. Differences in immune components of blood, spleen and head kidney between diploid and auto-and allotriploid Salmonidae //Tissue and Cell. – 2020. – Т. 67. – С. 101445.

24. Mokhtar, D. M., Zaccone, G., Alesci, A., Kuciel, M., Hussein, M. T., & Sayed, R. K. (2023). Main components of fish immunity: An overview of the fish immune system. Fishes, 8(2), 93.

25. Pavlidis M. et al. Blood cell profile of six Mediterranean mariculture fish species // Journal of Applied Ichthyology. – 2007. – Т. 23. – №. 1. – С. 70-73.

26. Suljević D., Mitrašinović-Brulić M. The first record of brook trout (Salvelinus fontinalis, Salmonidae) blood cell characteristics and hematological profile: the influence of fish sex on leukocyte count //Aquaculture International. – 2020. – Т. 28. – №. 6. – С. 2505-2516.

27. Wang T., Secombes C.J. The cytokine networks of adaptive immunity in fish // Fish Shellfish Immunol. — 2013. — Vol. 35, Iss. 6. — P. 1703–1718. DOI: 10.1016/j.fsi.2013.08.030.

28. Руководство по изучению питания рыб в естественных условиях / Акад. Наук СССР, Отд-ние биол. наук; [отв. ред. акад. Е. Н. Павловский]. - Москва: Изд-во Акад. наук СССР, 1961. - 262 с.

29. Определитель паразитов пресноводных рыб фауны СССР. Т. 3: Многоклеточные. Ч. 2 / под ред. О. Н. Бауера; Акад. наук СССР, Зоол. ин-т. - М.: Наука, 1987. - 583 с.