Воздействие различных добавок на уровень антибактериальной защиты молоди стерляди

Важная задача для успешного развития аквакультуры – повышение устойчивости рыб к инфекциям на ранних стадиях онтогенеза, когда иммунная система еще не сформирована. Основную функцию защиты исполняют физические барьеры: кутикула и слизистая оболочка, в состав которой входят антимикробные пептиды и иммуноглобулины. Основную роль в нейтрализации вредоносной микрофлоры играет фермент лизоцим, обладающий бактериолитической активностью. Цель исследования – изучение влияния различных препаратов на уровень антибактериальной защиты молоди стерляди. Исследование проводилось в течении 27 сут/ на молоди стерляди. Рыб разделили на 7 групп: контрольную и 6 опытных, получавших различные препараты («Антибак-100», «Суб-Про», «Экофлор», «Акватан», «Ронколейкин» и «Полифепан»). Препараты добавляли в корм согласно инструкциям. Пробы для анализа бактериального обсеменения отбирали на 7-е, 14-е, 21-е и 27-е сут. Для исследования отбирали по 4 особи из каждой группы. С рыб убирали воду с помощью фильтровальной бумаги и делали отпечаток на твердую среду (питательный рыбопептонный агар) в индивидуальный сектор. Чашки Петри убирали на 1 сут в термостат при температуре 26°C. Затем визуально подсчитывали количество бактериальных колоний в каждом секторе. За время исследования зафиксированы колебания бактериальной обсемененности во всех исследуемых группах. Максимальное снижение бактериальной обсемененности наблюдали на 14 – 21-е сут. Наиболее низкое количество бактериальных колоний на теле молоди стерляди установлено в группах, получавших пробиотик «Суб-Про» и иммуномодулятор «Ронколейкин». В конце эксперимента зафиксирован рост бактериальной обсемененности. В последние 2 недели эксперимента во всех опытных группах обнаружено достоверно низкое количество колоний по сравнению с контролем. Полученные данные указывают на различное по продолжительности и эффективности антибактериальное действие используемых препаратов.

1. Magnadottir, B. Innate immunity of fish (overview) / B. Magnadottir // Fish Shellfish Immunol. – 2006. – 20, – № 2. – P. 137-151. – DOI: 10.1016/j.fsi.2004.09.006.

2. Pietrzak, E. Innate Immune Responses of Skin Mucosa in Common Carp (Cyprinus Carpio) Fed a Diet Supplemented with Galactooligosaccharides / E. Pietrzak, J. Mazurkiewicz, A. Slawinska // Animals (Basel). – 2020. – 10, – № 3. – P. 438. – DOI: 10.3390/ani10030438.

3. Zhang, Y. A. IgT, a primitive immunoglobulin class specialized in mucosal immunity / Y. A. Zhang, I. Salinas, J. Li, D. Parra, S. Bjork, Z. Xu, S. E. LaPatra, J. Bartholomew, J.O. Sunyer // Nat Immunol. – 2010. – 11, – № 9. – P. 827-835. – DOI: 10.1038/ni.1913.

4. Парфенова, С. Р. Лизоцимная активность слизи рыб / С. Р. Парфенова // StudNet. – 2020. – № 12. – С. 1034–1040. Режим доступа:

5. Subramanian, S. Comparison of antimicrobial activity in the epidermal mucus extracts of fish / S. Subramanian, N. W. Ross, S. L. MacKinnon // Comp Biochem Physiol B Biochem Mol Biol. – 2008. – Vol. 150, – № 1. – P. 85-92. – DOI: 10.1016/j.cbpb.2008.01.011.

6. Полоз, С. В. Оценка устойчивости рыб к заражению паразитами при стрессовом воздействии и определение показателей резистентности (экспериментальное исследование) / С. В. Полоз, С. М. Дегтярик, Г. В. Слободницкая, И. И. Стрельченя // Экология и животный мир. – 2024. – № 1. – С. 28-33. Режим доступа: https://animal.belal.by/jour/article/view/153

7. Иркитова, А. Н. Оптимизация метода определения антагонистической активности пробиотических бактерий / А. Н. Иркитова, Е. С. Яценко // Технологии пищевой и перерабатывающей промышленности АПК – продукты здорового питания. – 2017. – № 5 (19). – С. 113-117. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=32607459

8. Юхименко, Л. Н. Лечебные и профилактические мероприятия против бактериозов в рыбоводстве / Л. Н. Юхименко, С. Б. Токарева, М. С. Кукин, Л. И. Бычкова // Ветеринария и кормление. – 2021. – № 6. – С. 67-69. – DOI: 10.30917/ATT-VK-1814-9588-2021-6-18. Режим доступа: https://elibrary.ru/xozywt

9. Зеков, Д. Д. Определение эффективных норм введения кормовой добавки Акватан в рацион радужной форели с биологической оценкой влияния на рыбохозяйственные показатели / Д. Д. Зеков, М. В. Ульянов, Д. В. Микряков, Т. А. Суворова // Рыбоводство и рыбное хозяйство. – 2021.– № 11. – С. 66-77. – DOI: 10.33920/ sel09211106. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=47327779

10. Использование эллаготанинов в рационах аквакультуры. [Электронный ресурс] – 2020. – URL: https://apknews.su/article/213/2594/ (дата обращения 12.05.2025).

11. Tkachenko, H. The antibacterial activity of the ethanolic leaf extract of Ficus pumila l. (moraceae) against fish bacterial pathogens / H. Tkachenko, L. Buyun, O. Kasiyan, E. Terech-Majewska, Z. Osadowski // Научные труды Дальрыбвтуза. – 2018. – Vol. 45, – №. 2. – P. 20-30. Режим доступа: https://elibrary.ru/item.asp?id=35176457

12. Mohammadian, T. Administrations of autochthonous probiotics altered juvenile rainbow trout Oncorhynchus mykiss health status, growth performance and resistance to Lactococcus garvieae, an experimental infection / T. Mohammadian, M. Nasirpour, M. R. Tabandeh, A. A. Heidary, R. GhaneiMotlagh, S. S. Hosseini // Fish Shellfish Immunol. – 2019. – № 86. – P. 269-279. – DOI: 10.1016/j.fsi.2018.11.052.

13. Бычкова, Л. И. Пробиотический препарат СУБ-ПРО (субалин) – альтернатива антибиотикам / Л. И. Бычкова, Л. Н. Юхименко, А. Г. Ходак, О. С. Скоробогатько // Рыбоводство. – 2008. – № 2. – С. 48-49. – Режим доступа: https://elibrary.ru/author_items.asp?authorid=1028699&pubrole=100&show_refs= 1&show_option=0

14. Дегтярик, С. М. Влияние растительных экстрактов на возбудителей аэромонозов и псевдомонозов рыб / С. М. Дегтярик, Е. И. Гребнева, Г. В. Слободницкая, Н. А. Бенецкая, Е. В. Максимьюк, А. В. Беспалый // Вопросы рыбного хозяйства Беларуси. – 2016. – № 32. – С. 249- 261. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=28114134

15. Biller-Takahashi, J. D. Fish Immunology. The modification and manipulation of the innate immune system: Brazilian studies / J. D. Biller-Takahashi, E. C. Urbinati // An Acad Bras Cienc. – 2014. – Vol. 86, – № 3. – P. 1484-506. – DOI: 10.1590/0001-3765201420130159.

16. Immanuel, G. Dietary medicinal plant extracts improve growth, immune activity and survival of tilapia Oreochromis mossambicus / G. Immanuel, R. P. Uma, P. Iyapparaj, T. Citarasu, S. M. Punitha Peter, M. Michael Babu, A. Palavesam // J. Fish Biol. – 2009. – Vol. 74, – № 7. – P. 1462-1475. – DOI: 10.1111/j.1095-8649.2009.02212.x.

17. Nya, E. J The garlic component, allicin, prevents disease caused by Aeromonas hydrophila in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum) / E. J Nya, Z. Dawood, B. Austin // J Fish Dis. – 2010. – Vol. 33, – № 4. – P. 293-300. – DOI: 10.1111/j.1365-2761.2009.01121.x.

18. Нечаева, Т. А. Эффективность применения рекомбинантного интерлейкина-2 (Ронколейкин) в форелеводстве / Т. А. Нечаева, М. В. Островский // Международный вестник ветеринарии. – 2009. – № 3. – С. 43-49. Режим доступа: https://elibrary.ru/llzgzv

19. Зуева, М. С. Современный опыт включения биологически активных кормовых добавок в рацион рыб / М. С. Зуева // Животноводство и кормопроизводство. – 2022. – 105, – № 4. – С. 146-164. Режим доступа: http://gk.fncbst.ru/arhiv/new/vypuski-2022-goda/tom-105-№-4/teoriya-ipraktika-kormleniya/zueva-m-s

20. Mehrabi, Z. Immunity and growth improvement of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) fed dietary nettle (Urtica dioica) against experimental challenge with Saprolegnia parasitica / Z. Mehrabi, F. Firouzbakhsh, G. Rahimi-Mianji, H. Paknejad // Fish Shellfish Immunol. – 2020. – № 104. – P. 74-82. – DOI: 10.1016/j.fsi.2020.05.050.

21. Bulfon, C. Resistant and susceptible rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) lines show distinctive immune response to Lactococcus garvieae / C. Bulfon, M. Prearo, D. Volpatti, O. Byadgi, M. Righetti, M. G. Maniaci, V. Campia, P. Pastorino, F. Pascoli, A. Toffan, C. Biolatti, P. L. Acutis, S. Colussi // Fish Shellfish Immunol. – 2020. – № 105. – P. 457-468. – DOI: 10.1016/j.fsi.2020.06.040.

22. Jinendiran, S. Modulation of innate immunity, expression of cytokine genes and disease resistance against Aeromonas hydrophila infection in goldfish (Carassius auratus) by dietary supplementation with Exiguobacterium acetylicum S01 / S. Jinendiran, A. A. Nathan, D. Ramesh, B. Vaseeharan, N. Sivakumar // Fish Shellfish Immunol. – 2019. – № 84. – P. 458-469. – DOI: 10.1016/j.fsi.2018.10.026.

23. Bu, X. Dietary yeast culture modulates immune response related to TLR2-MyD88- NF-kβ signaling pathway, antioxidant capability and disease resistance against Aeromonas hydrophila for Ussuri catfish (Pseudobagrus ussuriensis) / X. Bu, X. Lian, Y. Wang, C. Luo, S. Tao, Y. Liao, J. Yang, A. Chen, Y. Yang // Fish Shellfish Immunol. – 2019. – № 84. – P. 711-718. – DOI: 10.1016/j.fsi.2018.10.049.

24. Kar, B. Variation in susceptibility pattern of fish to Argulus siamensis: Do immune responses of host play a role? / B. Kar, C. Moussa, A. Mohapatra, J. Mohanty, P. Jayasankar, P. K. Sahoo // Vet Parasitol. – 2016. – № 221. – P. 76-83. – DOI: 10.1016/j.vetpar.2016.03.013.