Correction of intestinal biocenosis in piglets during mycotoxicosis caused by enterosorbents

  Microscopic fungi pose a significant danger to animal and human health, because their ability to produce mycotoxins are highly toxic, mutagenic, teratogenic and carcinogenic. The intestinal tract is the first defense of the organism against the ingress of contaminants. The gut microbiota can vary  within a species, so different responses to mycotoxin can be observed. High  concentrations of contaminants such as mycotoxins can damage the intestinal mucosa. The article reports the analysis of the intestinal biocenosis of piglets  with mycotoxicosis after the use of enterosorbents of mineral and organic origin (shungite from the Zazhoginsky deposit, the Republic of Karelia, zeolite from the Shatrashansky deposit, the Republic of Tatarstan, plant beta-glucans). Experimental research were carried out on 16 pigletsweaners of large white  breed of 70 days of age, divided into 4 equivalent groups. The animals were fed and monitored for 60 days.
The toxic food was obtained by introducing into the diet the mycotoxins: T-2 toxin (0,2 mg/kg), zearalenone (1 mg/kg), deoxynivalenol (0,5 mg/kg). Studies of intestinal microbiocenosis in animals with mycotoxicosis showed a decrease in the concentration of bifidobacteria and lactobacilli, an increase in yeast fungi, Escherichia coli, the appearance of Salmonella and Escherichia, which have hemolytic activity. 
The research provides that the correction of the intestinal biocenosis with enterosorbents contributed to the normalization of the intestinal biocenosis of  animals with mycotoxicosis. 

1. Бородулина, В.И. Влияние различных дозировок адсорбента микотоксинов «Фунгинорм» на микрофлору кишечника свиней на откорме / В.И. Бородулина, Н.А. Садомов // Животноводство и ветеринарная медицина. - 2018. - № 4. - С. 3-6.

2. Ветеринарная микология: учебное пособие / А.Ф. Кузнецов. 2- е изд., испр. и доп. М.: Университеты России, 2017.– 417 с.

3. ГОСТ 34100.1-2017/ ISO/IEC Guide 98-1:2009. Неопределенность измерения. Введение в руководства по выражению неопределенности измерения. М.: Стандартинформ. 2018. 28 с.

4. ГОСТ Р 8.736-2011. Государственная система обеспечения единства измерений (ГСИ). Измерения прямые многократные. Методы обработки результатов измерений. Основные положения. М.: Стандартинформ. 2013. 24 с.

5. Методические рекомендации «Выделение и идентификация бактерий желудочно-кишечного тракта животных», утверждённые Департаментом ветеринарии МСХ РФ №13-5-02/1043 от 11 мая 2004 г. – 84 с.

6. Мишина, Н.Н. Коррекция ростовесовых показателей свиней энтеросорбентами при полимикотоксикозе / Н.Н. Мишина, А.Ф. Хасиятуллин, Р.М. Потехина [и др.]. // Актуальные вопросы совершенствования технологии производства и переработки продукции сельского хозяйства. - 2020.- №22.- С. 468-470.

7. Мухарлямова, А.З. Ветеринарно-санитарная экспертиза мяса поросят при афлатоксикозе и на фоне лечения / А.З. Мухарлямова, А.М. Тремасова // Актуальные вопросы совершенствования технологии производства и переработки продукции сельского хозяйства. - 2020. - № 22. - С. 474-476.

8. Папуниди, К.Х. Применение энтеросорбентов в животноводстве / К.Х. Папуниди, М.Я. Тремасов, А.А. Иванов [и др.]. // Ветеринарный врач. -2010. - №5. - С. 20-22.

9. Применение сорбентов для профилактики нарушения обмена веществ и токсикозов животных / К.Х. Папуниди, Э.И. Семёнов, И.Р. Кадиков [и др.]. монография. Казань: ФГБНУ «ФЦТРБ-ВНИВИ», 2018. 224 с.

10. Шамилова, Т.А. Применение пробиотика энтероспорина в свиноводстве при микотоксикозе / Т.А. Шамилова, Л.Е. Матросова, М.Я. Тремасов [и др.]. // Ветеринария. – 2013. - №5. – С. 24-26.

11. Firmin, S. Modification of aflatoxin B1 and ochratoxin A toxicokinetics in rats administered a yeast cell wall preparation / S. Firmin, P. Gandia, D.P. Morgavi [et al.]. // Food Addit. Contam. Part A. – 2010. – Vol. - 27. P. 1153–1160.

12. Gao, Y.N. Aflatoxin M1 cytotoxicity against human intestinal Caco-2 cells is enhanced in the presence of other mycotoxins / Y.N. Gao, J.Q. Wang, S.L. Li // Food Chem. Toxicol. - 2016. – Vol.96. - P. 79–89.

13. Grenier, B. Modulation of intestinal functions following mycotoxin ingestion: Metaanalysis of published experiments in animals / B. Grenier, T.J. Applegate // Toxins. – 2013. - Vol.5. - P. 396–430.

14. Kim, S.W. Efficacy of a yeast cell wall extract to mitigate the eect of naturally cooccurring mycotoxins contaminating feed ingredients fed to young pigs: impact on gut health, microbiome, and growth / S. W. Kim, D. M. Holanda, X. Gao [et al.]. // Toxins. – 2019. – Vol.11. – P. 633.

15. Piotrowska, M. The effect of experimental fusarium mycotoxicosis on microbiota diversity in porcine ascending colon contents / M. Piotrowska, K. Slizewska, A. Nowak [et al.]. // Toxins. – 2014. - Vol.6. - P. 2064–2081.

16. Taranu, I. Assessment of the eacy of a grape seed waste in counteracting the changes induced by aflatoxin B1 contaminated diet on performance, plasma, liver and intestinal tissues of pigs after weaning / I. Taranu, D.E. Marin, M. Palade [et al.]. // Toxicon. -

17. – P. 24–31.

18. Wang, J.P. Effects of montmorillonite clay on growth performance, nutrient digestibility, vulva size, faecal microflora, andoxidative stress in weaning gilts challenged with zearalenone / J.P. Wang, F. Chi, I.H. Kim // Anim. Feed. Sci. Technol. - 2012. – Vol.178. – P. 158–166.

19. Weaver, A. Protective effect of two yeast based feed additives on pigs chronically exposed to deoxynivalenol and zearalenone / A. Weaver, M. See, S. Kim // Toxins. - 2014. - Vol.6. - P.3336–3353.

20. Yanan, G. The Compromised intestinal barrier induced by mycotoxins / G. Yanan, Lu Meng, L. Huimin [et al.]. // Toxins. – 2020. – Vol. 12(10). – P. 619.

21. Yiannikouris, A. Comparison of the sequestering properties of yeast cell wall extract and hydrated sodium calcium aluminosilicate in three in vitro models accounting for the animal physiological bioavailability of zearalenone / A. Yiannikouris, H. Kettunen, J. Apajalahti [et al.]. // Food Addit. Contam. Part A. - 2013. - Vol.30. - P.1641–1650.