Исследование влияния плазменной струи на регенерацию коленного хряща кролика

Суставной хрящ биомеханически является соединительной тканью, поэтому отсутствие кровеносных сосудов, нервов, лимфотока и низкий метаболизм вызывают его медленное и отсроченное восстановление. Поэтому очень важно использовать правильные методы лечения для восстановления хряща. Цель исследования-Изучение влияния плазменной струи на регенерацию коленного хряща кролика. Настоящее исследование было проведено на 12 новозеландских белых взрослых кроликах-самцах весом примерно 2,0-2,5 кг. Для подготовки коленного хряща выполняли санацию коленного хряща путем хондрэктомии методом выскабливания во всех трех группах лечения. После трех недель лечения кроликов подвергали эвтаназии, и степень регенерации хряща регистрировали макроскопически и путем записи изображений, а также фиксировали в 10% формалине для гистопатологического исследования. Был выбран метод окрашивания, который обычно использовался в лабораториях патологии. Наблюдение и измерение толщины суставного хряща проводили с помощью глазной сетки. И в конце полученные данные были проанализированы статистически. Результаты, полученные в настоящем исследовании, показали, что использование метода плазменной струи улучшает хрящевую ткань таким образом, что при исследовании гистопатологических срезов было обнаружено, что суставной хрящ в группе плазменной струи вызывает образование волокнистого хряща в месте разрушения суставного хряща, а также применение плазмоструйного воздействия положительно влияет на регенерацию хряща кролика.

1. Almadani, Yasser H et al. “Wound Healing: A Comprehensive Review.” Seminars in plastic surgery vol. 35,3 (2021): 141-144. doi: 10.1055/s-0041-1731791

2. Aragona, M., et al., Defining stem cell dynamics and migration during wound healing in mouse skin epidermis. Nature communications, 2017. 8(1): p. 14684.

3. Castano-Betancourt, M.C., et al., Novel genetic variants for cartilage thickness and hip osteoarthritis. PLoS genetics, 2016. 12 (10): p. e1006260.

4. Chen, S., et al., Meniscus, articular cartilage and nucleus pulposus: a comparative review of cartilage-like tissues in anatomy, development and function. Cell and tissue research, 2017. 370: p. 53-70.

5. Wallace, H.A., B.M. Basehore, and P.M. Zito, Wound healing phases. 2017.

6. Barman, P.K. and T.J. Koh, Macrophage dysregulation and impaired skin wound healing in diabetes. Frontiers in cell and developmental biology, 2020. 8: p. 528.

7. Wang, P., H, Huang B‐S, Horng H‐C, Yeh C‐C, Chen Y‐J. Wound healing. J Chin Med Assoc, 2018. 2(81): p. 94-101.

8. Monika, P., et al., Challenges in healing wound: Role of complementary and alternative medicine. Frontiers in Nutrition, 2022. 8: p. 1198.

9. Wang, M., et al., Nanomaterials applied in wound healing: Mechanisms, limitations and perspectives. Journal of Controlled Release, 2021. 337: p. 236-247.

10. Wang, Z., et al., Treatment of Traumatic Cartilage Defects of Rabbit Knee Joint by Adipose Derived Stem Cells Combined with Kartogenin Hydroxyapatite NanoMicrosphere Complex. Journal of Biomedical Nanotechnology, 2022. 18(1): p. 61-76.

11. Rosen, R.D. and B. Manna, Wound dehiscence, in StatPearls [Internet]. 2022, StatPearls Publishing.

12. Loy, B.N., et al., A biomechanical and structural comparison of articular cartilage and subchondral bone of the glenoid and humeral head. Orthopaedic journal of sports medicine, 2018. 6(7): p. 2325967118785854.

13. Lindholm, C. and R. Searle, Wound management for the 21st century: combining effectiveness and efficiency. International wound journal, 2016. 13: p. 5-15.

14. Mathews, S. and S. Jain, Anatomy, head and neck, cricoid cartilage, in StatPearls [Internet]. 2021, StatPearls Publishing. 15. Huang, K.-Y., et al., The roles of IL-19 and IL-20 in the inflammation of degenerative lumbar spondylolisthesis. Journal of Inflammation, 2018. 15(1): p. 1-10.

15. Laroussi, M., Cold plasma in medicine and healthcare: The new frontier in low temperature plasma applications. Frontiers in Physics, 2020. 8: p. 74.

16. Zura, R., et al., Epidemiology of fracture nonunion in 18 human bones, JAMA Surg. 151 (2016) e162775. 2016.

17. Kolimi, P., et al., Innovative Treatment Strategies to Accelerate Wound Healing: Trajectory and Recent Advancements. Cells, 2022. 11(15): p. 2439.

18. Díaz-García, D., et al., A beginner’s introduction to skin stem cells and wound healing. International Journal of Molecular Sciences, 2021. 22(20): p. 11030.

19. Bacci, S., Cellular mechanisms and therapies in wound healing: Looking toward the future. 2021, Multidisciplinary Digital Publishing Institute. p. 1611.

20. Tottoli, E.M., et al., Skin wound healing process and new emerging technologies for skin wound care and regeneration. Pharmaceutics, 2020. 12(8): p. 735.

21. Swanson, T., et al., Ten top tips: identification of wound infection in a chronic wound. Wounds International, 2015. 6(2): p. 22-27.

22. Shimatani, A., et al., In vivo study on the healing of bone defect treated with nonthermal atmospheric pressure gas discharge plasma. Plos one, 2021. 16(10): p. e0255861.

23. Manafi, A., et al., Effects of platelet-rich plasma on cartilage grafts in rabbits as an animal model. World Journal of Plastic Surgery, 2012. 1(2): p. 91.

24. Dorehlo, S., S. Mohamadi Gorji, and N. Hayati Rodbari, Therapeutic effect of cold plasma on burnt skin in adult mice. Developmental Biology, 2020. 12(3): p. 21-30.

25. Ale-Ebrahim, M., E. Janani, and P. Mortazavi, The effect of cold argon plasma in atmospheric pressure on increasing blood coagulation speed and full-thickness cutaneous wound healing in rats. Veterinary Clinical Pathology The Quarterly Scientific Journal, 2018. 12(4 (48) Winter): p. 323-336.

26. Brun, P., et al., Disinfection of ocular cells and tissues by atmospheric-pressure cold plasma. PloS one, 2012. 7(3): p. e33245.

27. Guo, J.L., et al., A rabbit femoral condyle defect model for assessment of osteochondral tissue regeneration. Tissue Engineering Part C: Methods, 2020. 26(11): p. 554-564.