Эффективность использования мезенхимальных стволовых клеток после криоконсервации спермы козлов-производителей

Целью исследований явилось установление эффективности использования мезенхимальных стволовых клеток из жировой ткани и костного мозга козлов после криоконсервации спермы. Результаты четырехчасовой инкубации образцов спермы после оттаивания указывают на наличие достоверной разницы значений при инкубации с мезенхимальными стволовыми клетками (МСК) из жировой ткани/костного мозга и без них (среда OptiXcell). Так, в процессе четырехчасовой инкубации спермы после оттаивания, статистически значимое сокращение количества нормальных сперматозоидов отмечалось во всех исследуемых группах. При этом разница значений в контрольной группе составила 1,3 (p<0,01, 2 часа) и 1,4 (p<0,01, 4 часа) раза; первой опытной группе – 1,1(p<0,01, 4 часа) раз; второй опытной группе – 1,1(p<0,01, 2 часа) и 1,3 (p<0,01, 4 часа) раз по сравнению с результатами 0 часов инкубации. Образцы контрольной и первой опытной групп имели одинаковую динамику достоверных изменений двигательной активности сперматозоидов при четырехчасовой инкубации после оттаивания – статистически значимое снижение количества прогрессивно двигающихся сперматозоидов в 1,6 раз (p<0,05 – контрольная группа, p<0,01 – первая опытная группа), и, напротив, достоверное увеличение количества непрогрессивно двигающихся сперматозоидов в 1,3 раза (p<0,05 для обеих групп). Выраженная двигательная активность наблюдалась у сперматозоидов первой опытной группы по завершению 4-х часовой инкубации, равная 21,45±4,58 %. Наибольшее количество жизнеспособных сперматозоидов было зарегистрировано в первой опытной группе при 4-х часовой инкубации образцов с МСК, полученного из костного мозга – 37,13±2,21%, наибольшее количество сперматозоидов с интактными акросомами - во второй опытной группе (МСК ЖТ). Таким образом, можно предположить, что МСК оказывает регенеративный эффект на структуру сперматозоидов после криоконсервации. Для раскрытия механизма воздействия МСК на структуру сперматозоидов необходимо продолжить исследования. 

1. Баженова, Н. Б. Оценка качественных показателей спермы животных: учебнометодическое пособие / Н. Б. Баженова, К. В. Племяшов, Е. А. Корочкина. – Санкт-Петербург: Санкт-Петербургский государственный университет ветеринарной медицины, 2023. – 25 с.

2. ГОСТ 32222–2013.Средства воспроизводства. Сперма. Методы отбора проб. – Веден 2015-01-27. – М.: Стандарт информ, 2018. – 10 с.

3. Корочкина, Е. А. Влияние мезенхимальных стромальных клеток на качество спермы баранов после криоконсервации / Е. А. Корочкина, В. С. Пушкина // Ветеринария и кормление. – 2024. – № 4. – С. 55-59. – DOI 10.30917/ATT-VK-1814-9588-2024-4-10.

4. Мирошина, Т. А. Перспективы молочного козоводства / Т. А. Мирошина // Проблемы интенсивного развития животноводства и их решение: материалы международной научно-практической конференции, Брянск, 25–26 марта 2021 года. – Брянск: Брянский государственный аграрный университет, 2021. – С. 529-532.

5. Тощев, B.K. Экстерьерные особенности коз белой русской породы и их помесей с зааненскими козлами /В.К. Тощев, Е.В. Царегородцева, Г.Н.Мустафина // Мосоловские чтения. - Йошкар-Ола, 2006. - Вып.8. - С.247-249.

6. Goat Semen Cryopreservation Protocol. // National Animal GermplasmProgram. - 2016. (5)

7. Xu, B. Evaluation of lipidomic change in goat sperm after cryopreservation / Xu B, Wang R, Wang Z, et al. // Frontiers in veterinary science. - 2022.-Vol. 9.- P 1-11. (9)

8. Zhang, W. Beneficial effect of proline supplementation on goat spermatozoa quality during cryopreservation / Zhang Weijing, Lingjiang Min, Yajing Li, et al.// Animals. - 2022. - Vol. 12(19). -P. 1-13.(10)