Влияние гипоксена на гистологические изменения в печени белых крыс при использовании модели токсического гепатита

Любые нарушения в организме, вызванные инфекционным воздействием, применением лекарственных препаратов, вакцин и т.д. сопровождаются нарушением работы печени. Наиболее высоким гепатотоксическим действием облапают различные ксенобиотики которые поступают в организм животных с кормом или водой. Поэтому актуальным направлением современных исследований является поиск средств, повышающих устойчивость печени к патологическим воздействиям усиливающих ее обезвреживающие функции. Для достижения цели на разрешение были поставлены следующие задачи: установить влияние гипоксена на среднесуточные приросты крыс на фоне экспериментального токсического гепатита, оценить гепатопротекторный эффект гипоксена на основании гистологических изменений в печени животных, сравнить фармакологический эффект гипоксена с гептраном. При изучении гепатопротекторных свойствагипоксена, при этом использовали модель экспериментального токсического гепатита на белых крысах. Эффективность действия препаратов оценивали по клиническому состоянию белых крыс и гистологических изменениях в печени. Острый токсический гепатит вызывали внутрибрюшинным введением белым крысам четырёххлористого углерода на вазелиновом масле из расчёта 0,4 мл на 100 г массы тела в течение 3-х суток однократно. При микроскопическом исследовании печени у животных обнаружено нарушение цитоплазматических мембран гепатоцитов, что сопровождалось жировом перерождении клеток печени и развитием гепатоза. Применение гипоксена остановил этот патологический процесс. После применения препарата у животных повысилась масса тела. При анализе гистосрезов печени признаков жировой дистрофии обнаружено не было. Таким образом, гипоксен можно применять животным в качестве гепатопротекторного средства в дозе 50,0 мг/кг массы тела.

белые крысы, четырёххлористый углерод, гипоксен, гептран, печень

1. Абрамов С.С. Перекисное липидов, его значение в болезней животных, коррекции: монография/ С. С. [и др.].- Витебск: 2007.-154 с.

2. Венгеровский, А.И. 2000. Методические указания по изучению гепатозащитной активности фармакологических веществ. В кн. Руководство по экспериментальному (доклиническому) изучению новых фармакологических веществ. М.: Ремедиум. - С. 228-231.

3. Катикова О.Ю. Влияние мексидола на состояние гомеостаза и перекисное окисление липидов при интоксикации парацетамолом // Эксперим. и клин, фармакология. - 2002. - Т.65, №5. - 53-56.

4. Колесниченко С.П. Эффективность использования карофлавина при гепатозах цыплят-бройлеров / С.П. Колесниченко, Н.Г. Савушкина, С.Б. Носков, С.В. Наумова, Я.П. Масалыкина // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины имени Н.Э.Баумана. - Казань, 2017. - Т.232 (4). - С. 85-88.

5. Кузьминова, Е. В. Перспективы спектра применения в ветеринарии /Е. В. Кузьминова, М. П. Е. А. Старикова, Е. В. Тяпкина, А. В. // Политематический сетевой научный журнал государственного аграрного 2014. № 102. С. 787

6. Матвеев, С.Б. Оценка эндогенной интоксикации по показателям среднемолекулярных пептидов при неотложных состояниях / С.Б. Матвеев, Н.Ф. Федорова. М.А. Годков // Клиническая лабораторная диагностика. - 2009. - № 5. - С. 16-18.

7. Reznichenko L.V., Noskov S.B., Penzeva M.N., Manohin A.A. International Journal of Pharmacy and Technology, 2016. - Vol. 8, Issue No.4 -26882-26888.

8. Reznichenko L, Bykova O, Denisova F, Vodyanitskaia S, Shcherbinin R. Diets International Journal of Advanced Biotechnology and Research (IJABR). Vol. 10, Issue 2, 2019, pp. 560-566.