Содержания малонового диальдегида в тканях золотистой форели (Oncorchynchus mykiss) при обогащении кормов органоминеральными хелатными комплексами

Активность антиоксидантных ферментов зависит от ряда переменных в т.ч. содержания нутриентов в рационе. Для нормализации минеральной компоненты рационов предлагается применять различные металлсодержащие препараты в т.ч хелатные (внутрикомплексные) соединения. Рядом исследований продемонстрировано, что хелатные соединения обладают большей биодоступностью в сравнении с неорганическими источниками микроэлементов.

Целью исследования явилось изучение влияния хелатного комплекса на процессы свободно-радикального окисления в организме форели, путем определения активности каталазы и содержания малонового альдегида. Исследовали органоминеральный хелатный комплекса (ООО “Юпитер”, Россия). Действующая основа минеральной добавки: комплекс этилендиаминдиянтарной кислоты и лизина с микроэлементами (Fe, Mn, Cu, Zn, Co, Se, I). Рыбам опытных групп (n=10) в течение 30-ти дней задавали добавку, данные сравнивали с контролем (n=10). Хелатный комплекс задавали вместе с кормом один раз в день, в концентрации 0,5 г/кг (считая от массы корма). Определяли активность каталазы и концентрацию малонового альдегида в печени и мышцах. Применение органоминеральных хелатных комплексов приводило к снижению содержания малонового диальдегида в печени и скелетных мышцах. Снижение продуктов перекисного окисления липидов сопровождалось значимым увеличением активности каталазы. Проведенные исследования позволяют предположить, что металлы в составе хелатных комплексов приводят к увеличению активности антиоксидантных ферментов, в результате чего происходит снижение продуктов перекисного окисления липидов. Таким образом полученные результаты служат косвенным подтверждением эффективности применения органоминеральных хелатных комплексов в индустриальной аквакультуре.

1. Марченко Ирина Сергеевна Развитие аквакультуры как фактор обеспечения продовольственной безопасности // Евразийский Союз Ученых. 2015. №11-4 (20).

2. Martos-Sitcha, Juan Antonio et al. “Editorial: Welfare and Stressors in Fish: Challenges Facing Aquaculture.” Frontiers in physiology vol. 11 162. 25 Feb. 2020, doi:10.3389/fphys.2020.00162

3. Zengin, H. The effects of feeding and starvation on antioxidant defence, fatty acid composition and lipid peroxidation in reared Oncorhynchus mykiss fry. Sci Rep 11, 16716 (2021). https://doi.org/10.1038/s41598-021-96204-y

4. Карбышев, М. С. Биохимия оксидативного стресса: Учебно-методическое пособие / М. С. Карбышев, Ш. П. Абдуллаев; под общ. ред. А. В. Шеспопалова. - Москва: Издательство XX, 2018. - 60с.

5. Tunçelli G, Ertik O, Bayrak BB, Memiş D, Yanardag R. Effects of swimming activity and feed restriction on antioxidant and digestive enzymes in juvenile rainbow trout: Implications for nutritional and exercise strategies in aquaculture. Vet Med Sci. 2024 May;10(3):e1466. doi: 10.1002/vms3.1466.

6. Лудан В. В., Польская Л. В. Роль антиоксидантов в жизнедеятельности организма // ТМБВ. 2019. №3.).

7. Ивахненко, В. И. Исследование активности металло-зависимых ферментов антиоксидантной защиты и показателей перекисного окисления липидов у крыс при действии алиментарных факторов: специальность 03.00.04 «Биохимия»: Автореферат на соискание кандидата биолологических наук / Ивахненко, В. И.; ГУ НИИ питания РАМН. — Москва, 2008. — 23 c.

8. Ghasemi, H.A., Hajkhodadadi, I., Hafizi, M. et al. Effect of advanced chelate technology-based trace minerals on growth performance, mineral digestibility, tibia characteristics, and antioxidant status in broiler chickens. Nutr Metab (Lond) 17, 94 (2020). https://doi.org/10.1186/s12986-020-00520-5

9. Каркищенко Н. Н., Каркищенко В. Н., Люблинский С. Л., Капанадзе Г. Д., Шустов Е. Б., Ревякин А. О., Болотских Л. А., Касинская Н. В., Станкова Н. В. Роль микроэлементов в спортивном питании и безопасность металлохелатов // Биомедицина. 2013. №2.

10. Кощаев А.Г., Горковенко Н.Е., Косых А.В., Антипова Д.В. Хелатные соединения и их использование для коррекции микроэлементозов сельскохозяйственных животных (обзор литературы). Ветеринария сегодня. 2024;13(2):136-142.

11. Лившиц, В. М. Биохимические анализы в кли нике: справочник [Текст] / В. М. Лившиц, В. И. Си дельникова. – М.: Медицинское информационное агентство, 1998. – С. 303 (20).

12. Богачева Е. В., Алабовский В. В., Перов С. Ю. Определение концентрации малонового диальдегида в сыворотке крыс, облученных электромагнитным полем метрового диапазона // Изв. Сарат. ун-та Нов. сер. Сер. Химия. Биология. Экология. 2016. №1.

13. Yu, H., Zhang, C., Zhang, X., Wang, C., Li, P., Liu, G., et al. (2020). Dietary nanoselenium enhances antioxidant capacity and hypoxia tolerance of grass carp Ctenopharyngodon idella fed with high-fat diet. Aquac. Nutr. 26, 545–557. doi:10.1111/anu.13016

14. Liu, G. X., Jiang, G. Z., Lu, K. L., Li, X. F., Zhou, M., Zhang, D. D., et al. (2017). Effects of dietary selenium on the growth, selenium status, antioxidant activities, muscle composition and meat quality of blunt snout bream, Megalobrama amblycephala. Aquac. Nutr. 23, 777–787. doi:10.1111/anu.12444

15. Behera, T., Swain, P., Rangacharulu, P.V. et al. Nano-Fe as feed additive improves the hematological and immunological parameters of fish, Labeo rohita H.. Appl Nanosci 4, 687–694 (2014). https://doi.org/10.1007/s13204-013-0251-8

16. Kumar, N., Krishnani, K.K. & Singh, N.P. Effect of Dietary Zinc-Nanoparticles on Growth Performance, Anti-Oxidative and Immunological Status of Fish Reared Under Multiple Stressors. Biol Trace Elem Res 186, 267–278 (2018). https://doi.org/10.1007/s12011-018-1285-2

17. Tang, Q.Q., Feng, L., Jiang, W.D. et al. Effects of Dietary Copper on Growth, Digestive, and Brush Border Enzyme Activities and Antioxidant Defense of Hepatopancreas and Intestine for Young Grass Carp (Ctenopharyngodon idella). Biol Trace Elem Res 155, 370–380 (2013). https://doi.org/10.1007/s12011-013-9785-6

18. Hernroth B., Baden S. P., Holm K., André T., Söderhäll I. (2004). Manganese induced immune suppression of the lobster, nephrops norvegicus. Aquat. Toxicol. 70:3, 223–231. doi: 10.1016/j.aquatox.2004.09.004

19. Abarghoei S., Hedayati A., Ghorbani R., Miandareh H. K., Bagheri T. (2016). Histopathological effects of waterborne silver nanoparticles and silver salt on the gills and liver of goldfish carassius auratus. Int. J. Environ. Sci. Technol. 13 (7), 1753–1760. doi: 10.1007/s13762-016-0972-9

20. Liu X. F., Zhang L. M., Guan H. N., Zhang Z. W., Xu S. W. (2013). “Effects of oxidative stress on apoptosis in manganeseinduced testicular toxicity in cocks.” Food & Chemical Toxicology 60. Complete (2013), 168–176. doi: 10.1016/j.fct.2013.07.058