Особенности элиминации экзогенного сорбитола у крупного рогатого скота

В статье представлены результаты исследования кинетики элиминации экзогенного сорбитола с мочой у клинически здоровых животных крупного рогатого скота. Установлены временные интервалы и количественные показатели выведения препарата, что является фундаментальной основой для разработки теста толерантности к сорбитолу в качестве предиктора функционального состояния гепатобилиарной системы. Результаты работы восполняют существующий пробел в данных о метаболизме сахароспиртов у жвачных животных. Особенности преджелудков КРС, населенных микробиотой, способной ферментировать различные углеводы и сахароспирты, теоретически могут влиять на процессы абсорбции и последующую кинетику сорбитола. Однако данные об элиминации экзогенного сорбитола в организме КРС в доступных научных источниках практически отсутствуют. В связи с вышеизложенным, целью настоящего исследования явилось изучение особенностей элиминации перорально введенного экзогенного сорбитола у крупного рогатого скота с оценкой его выведения с мочой для обоснования дальнейшего применения в качестве нагрузочного теста для оценки состояния гепатобилиарной системы. Полученные результаты демонстрируют, что у здорового КРС экзогенный сорбитол начинает обнаруживаться в моче через 2 часа после введения, достигает пиковой концентрации к 4-6 часу и практически полностью элиминируется в течение 24 часов. Важным выводом является наличие статистически значимых различий в уровне экскреции сорбитола между группами животных, различающихся по полу, возрасту, физиологическому статусу и типу кормления. Наблюдаемые различия, в частности, более высокая экскреция у бычков по сравнению с нетелями и коровами, а также у коров на высококонцентратном рационе по сравнению с аналогами на стандартном рационе, позволяют предположить, что на метаболизм сорбитола у жвачных могут влиять не только функция печени, но и особенности рубцового пищеварения, гормональный статус и уровень метаболизма. Это указывает на необходимость учета данных факторов при интерпретации нагрузочных тестов.

1. Гавриш, В. Г. Справочник ветеринарного врача: Лабораторная диагностика и биохимия животных / В. Г. Гавриш, И. И. Калюжный. — Ростов-на-Дону: Феникс, 2019. — 380 с. — ISBN 978-5-222-32145-6.

2. Трошин, А. Н. Оценка функционального состояния печени у собак с использованием бромсульфалеинового теста / А. Н. Трошин, М. В. Семенова // Российский ветеринарный журнал. Сельскохозяйственные животные. — 2020. — № 4. — С. 35-38.

3. Center, S. A. Liver Function Tests in Small Animal Practice / S. A. Center // The Veterinary Clinics of North America: Small Animal Practice. — 2023. — Vol. 53, № 1. — P. 93-128. — DOI: 10.1016/j.cvsm.2022.07.008.

4. Gori, E. Evaluation of ammonia tolerance test for diagnosis of hepatic encephalopathy in dogs with portosystemic shunt / E. Gori, M. Lippi, S. Pierini et al. // Journal of Veterinary Internal Medicine. — 2019. — Vol. 33, № 2. — P. 1682-1689. — DOI: 10.1111/jvim.15524.

5. Ibrahim, W. H. Current status of future directions of hepatic function assessment in critical illness / W. H. Ibrahim, A. M. Al Hail, R. R. Pathan // Journal of Veterinary Emergency and Critical Care. — 2021. — Vol. 31, № 4. — P. 435-448. — DOI: 10.1111/vec.13085.

6. Kovalkovičová, N. Dynamic liver function tests in dogs: A review / N. Kovalkovičová, J. Čobanová, I. Šutiaková // Acta Veterinaria Brno. — 2018. — Vol. 87, № 2. — P. 205-214. — DOI: 10.2754/avb201887020205.

7. Lisciandro, S. C. Use of the liver function test LiMAx in canine liver disease / S. C. Lisciandro, M. Hopper // Journal of Small Animal Practice. — 2021. — Vol. 62, № 6. — P. 449-455. — DOI: 10.1111/jsap.13312.

8. Mizuno, T. Ammonia tolerance test in dogs with portosystemic shunt / T. Mizuno, K. Hiraoka, K. Uchida // Journal of Veterinary Medical Science. — 2017. — Vol. 79, № 9. — P. 1539-1543. — DOI: 10.1292/jvms.17-0275.

9. Nelson, N. C. Comparison of fasting and postprandial plasma ammonia concentrations in dogs with and without hepatic disease / N. C. Nelson, C. G. Couto, C. E. Raleigh // Journal of Veterinary Internal Medicine. — 2016. — Vol. 30, № 3. — P. 825- 831. — DOI: 10.1111/jvim.13936.

10. Panti, A. The use of indocyanine green clearance testing to evaluate liver disease in dogs / A. Panti, C. R. Lamb, A. J. Caine // The Veterinary Journal. — 2020. — Vol. 256. — P. 105434. — DOI: 10.1016/j.tvjl.2020.105434.

11. Proot, S. J. P. The use of the ¹³Cmethacetin breath test for non-invasive assessment of liver function in dogs / S. J. P. Proot, J. Rothuizen, V. B. Favier // Veterinary Quarterly. — 2019. — Vol. 39, № 1. — P. 67-76. — DOI: 10.1080/01652176.2019.1621540.

12. Ruland, K. The ¹³C-methacetin breath test for quantitative liver function testing in dogs: A review / K. Ruland, A. Fischer, J. Hartmann // Tierärztliche Praxis Ausgabe K: Kleintiere / Heimtiere. — 2020. — Vol. 48, № 2. — P. 121-129. — DOI: 10.1055/a-1127-4730.

13. Саленко, Н. В. Современные методы оценки функционального состояния печени у продуктивных животных / Н. В. Саленко, А. А. Стекольников // Ветеринария, зоотехния и биотехнология. — 2021. — № 10. — С. 18-27.

14. Туманян, М. А. Диагностика заболеваний печени у мелких домашних животных: современные подходы и клинические тесты / М. А. Туманян, Е. В. Кривова // Ветеринарный врач. — 2022. — № 2. — С. 12-19.

15. Wagner, K. A. Interpretation of Liver Enzymes / K. A. Wagner, M. H. Hart // Veterinary Clinics of North America: Small Animal Practice. — 2017. — Vol. 47, № 3. — P. 663-675. — DOI: 10.1016/j.cvsm.2016.11.009.