Совершенствование способа культивирования респираторносинцитиального вируса для создания вакцины против респираторных инфекций телят
https://doi.org/10.52419/issn2072-2419.2025.4.97
Аннотация
Целью работы являлось изучение особенностей культивирования и определения инфекционной активности штамма респираторно-синцитиального вируса «РБ23» для дальнейшего создания живой аттенуированной импортозамещающей вакцины против ИРТ, ПГ-3 и РСВ для назальной иммунизации новорожденных телят. Качество репликации на клеточных линиях проводили путем оценки инфекционных титров по прямому цитопатическому действию вируса на клетки млекопитающих, а также использовали метод окрашенных фокусов. Методом количественной ПЦР определена степень репликации РСВ на культуре клеток ЛЭК в зависимости от сроков культивирования. Показано, что клетки ЛЭК и Т-1 являются пермессивными для РСВ. При этом чувствительность клеток ЛЭК превышала чувствительность клеток Т-1 на 1,96, 1,88 и 7,69 % соответственно, в трех последовательных пассажах. Смена среды МЕМ с добавлением глутамина при культивировании РСВ на 4 сутки способствовала усилению репликативной активности на 8,6 % по сравнению с флаконами, в которых смена среды не проводилась. Отмечено также, что оптимальным сроком культивирования РСВ является срок семь суток, дальнейшее культивирование приводит к деградации внеклеточных вирусных частиц, что снижает концентрацию вирионов на 26,5-40,0 %. Наработана биомасса РСВ «РБ23» для дальнейшего создания живой аттенуированной импортозамещающей вакцины против ИРТ, ПГ-3 и РСВ для назальной иммунизации новорожденных телят с инфекционным титром РСВ – 4,75±0,18 lg ТЦД 50/см3, титром по ФОЕ – 1,5x106 ФОЕ/см3 и количеством вирионов в вируссодержащей суспензии не ниже 4,5±0,20 млн. копий/мл.
Об авторах
Е. Ю. ТарасоваРоссия
канд. биол. наук, зав. лабораторией ветеринарной санитарии, вед. науч. сотр.
Н. И. Хаммадов
Россия
канд. биол. наук, зав. лабораторией молекулярно-генетического анализа, вед. науч. сотр.
М. А. Ефимова
Россия
д-р биол. наук, вед. науч. сотр.
Г. С. Кашеваров
Россия
канд. биол. наук, зав. лабораторией морфологических исследований, ст. науч. сотр.
И. Г. Каримуллина
Россия
канд. биол. наук, ст. науч. сотр.
Ф. Х. Калимуллин
Россия
канд. биол. наук, вед. науч. сотр.
П. В. Быкова
Россия
мл. науч. сотр.
Список литературы
1. Распространение респираторно-синцитиальной вирусной инфекции КРС на территории ряда регионов Российской Федерации / С. А. Андреев, А. В. Кононов, А. А. Нестеров, Е. А. Бухон, К. А. Шалина // Молодые ученые - науке и практике АПК : Материалы Международной научно-практической конференции аспирантов и молодых ученых, Витебск, 25–26 апреля 2024 года. – Витебск: Витебская государственная академия ветеринарной медицины, 2024. – С. 21–23.
2. Респираторно-синцитиальная инфекция крупного рогатого скота: особенности клинического проявления, патогенеза и молекулярной эпизоотологии (обзор) / С.В. Котенева, А.Г. Глотов, Т.И. Глотова [и др.] // Ветеринария сегодня. – 2025. – № 14(2). – С. 133-139. https://doi.org/10.29326/2304-196X-2025-14-2-133-139.
3. Изучение антигенных свойств ассоциированной вакцины против ИРТ, ВД-БС, ПГ-3 и хламидиоза крупного рогатого на кроликах / И. Р. Акбашев, С. В. Садыкова, Л. М. Яшагина [и др.] // Ветеринарный врач. – 2024. – № 2. – С. 39–42. https://doi.org/ 10.33632/1998-698X_2024_2_39.
4. Bovine respiratory disease during the midportion of the feeding period: Observations from vaccination history, viral and bacterial prevalence, and rate of gain in feedlot cattle / M. E. Theurer, M. D. Johnson, T. Fox [et al.] // Appl. Anim. Sci. – 2021. – № 37. – Р. 59–67. https://doi.org/10.15232/aas.2020-02090
5. Культуральные свойства вируса респираторно-синцитиальной инфекции крупного рогатого скота штамма «АБ 1908» / В.В. Кирпиченко, C.В. Кононова, А.В. Кононов [и др.] // Ветеринария сегодня. – 2019. – № 4. С. 31-36. https://doi.org/10.29326/2304-196X-2019-4-31-31-36
6. Коровкин А.С., Горенков Д.В., Волгин А.Р. Профилактика респираторно-синцитиальной вирусной инфекции: современное состояние и перспективы разработки вакцин // БИОпрепараты. Профилактика, диагностика, лечение. – 2024. – № 24(3). – С. 255–269. https://doi.org/10.30895/2221-996X-2024-24-3-255-26
7. Vaccination of calves at day of birth with attenuated vaccines against bovine respiratory syncytial virus, bovine parainfluenza type 3 virus and respiratory bovine coronavirus / M. H. van Rooij, M. Schmitz, J. M. H. Meessen [et al.] // Veterinary Vaccine. – 2023. – Vol. 2 (1). – 100014. https://doi.org/10.1016/j.vetvac.2023.100014
8. Comparative effectiveness of intranasal and parenteral vaccines for prevention of bovine respiratory disease in feedlot heifers / J. I. Szasz, T. C. Bryant, K. S. Blood [et al.] // Applied Animal Science. – 2023. – Vol. 39 (5). – P. 273–281. https://doi.org/10.15232/aas.2023-02396
9. Строганова И. Я., Войтова К. В. Методы обнаружения и идентификации респираторно-синцитиального вируса крупного рогатого скота в культуре клеток // Вестник КрасГАУ. – 2011. – №3. – С. 128-133. URL: https://cyberleninka.ru/article/n/metody-obnaruzheniya-i-identifikatsiirespiratorno-sintsitialnogo-virusa-krupnogorogatogo-skota-v-kulture-kletok (дата обращения: 04.08.2025).
10. Chamorro M. F., Palomares R. A. Bovine respiratory disease vaccination against viral pathogens. Modified-live versus inactivated antigen vaccines, intranasal versus parenteral, what is the evidence? // Vet. Clin. North Am. Food Anim. Pract. – 2020. – № 36. – Р. 461–472. https://doi.org/10.1016/j.cvfa.2020.03.006.
11. Modified-live versus inactivated respiratory viral vaccines for revaccinating beef calves at weaning / C.A. McNeff, C.A. Robison, B.K. Wilson [et al.] // Applied Animal Science. – 2023. – № 39 (1). – С. 1-13. https://doi.org/10.15232/aas.2022-02332
12. Reed L., Muench H. A simple method of estimating fifty per cent endpoints // American Journal of Epidemiology. – 1938. – № 27(3). – С. 493-497.
13. Calnec, B.W., Ljarrido E., Okazaki W. In vitro methods for assay of turkey herpes virus / V Avian Dis. – 1972. – V.16. – P.52-56. https://n2t.net/ark:/87292/w9sj33
14. Дизайн праймеров для индикации патогенных лептоспир методом гнездовой полимеразной цепной реакции в режиме реального времени / К.В. Усольцев, Р.И. Шангараев, К.С. Хаертынов [и др.] // Ветеринария, зоотехния и биотехнология. – 2025. – № 2. – С. 95-106. https://doi.org/10.36871/vet.zoo.bio.202502111
15. Дизайн специфических олигонуклеотидов для выявления контаминации культур клеток возбудителем вирусной диареи и микоплазмами при разработке интраназальной вакцины против респираторных болезней новорожденных телят / Н. И. Хаммадов, М. Е. Горбунова, М. А. Ефимова [и др.] // Ветеринарный врач. – 2025. – № 3. – С. 98-104. – https://doi.org/10.33632/1998-698X_2025_3_98.
Рецензия
Для цитирования:
Тарасова Е.Ю., Хаммадов Н.И., Ефимова М.А., Кашеваров Г.С., Каримуллина И.Г., Калимуллин Ф.Х., Быкова П.В. Совершенствование способа культивирования респираторносинцитиального вируса для создания вакцины против респираторных инфекций телят. Международный вестник ветеринарии. 2025;(4):97-106. https://doi.org/10.52419/issn2072-2419.2025.4.97
For citation:
Tarasova E.Yu., Кhammadov N.I., Efimova M.A., Kashevarov G.S., Karimullina I.G., Kalimullin F.Kh., Bykova P.V. Improving the method of cultivation of respiratory syncytial virus to create a vaccine against respiratory infections of calves. International Journal of Veterinary Medicine. 2025;(4):97-106. (In Russ.) https://doi.org/10.52419/issn2072-2419.2025.4.97
JATS XML


















